معلومة

تحديد البروتوزوا تحت المجهر

تحديد البروتوزوا تحت المجهر


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

لقد لاحظت ربما البروتوزوا من المياه العذبة الراكدة ومن تدفق المياه العذبة ببطء. أنا داهية كاملة. هل يمكنك معرفة ما هي هذه المخلوقات؟

https://www.youtube.com/watch؟v=6D5ck3zNJzA&t=474s

شكرا لك.

الصورة المضافة لتكون أكثر تحديدا


للوهلة الأولى ، قد تحمل الكائنات الحية ظهور الأوالي مثل ciliates. ومع ذلك ، أنا أؤمن بأن هذه الكائنات الدقيقة "الأنبوبية بالكامل" هي في الواقع دياتومات.

الدياتومات هي مجموعة متنوعة من الطحالب الدقيقة حقيقية النواة والتي تشكل نسبة كبيرة من مجموعة العوالق النباتية. (التراب الدياتومي هو بقايا جدرانها الجيرية)

من المحتمل أن تكون دياتومات بسبب غشاءها الصلب الظاهر ، وصبغها البني والأخضر الطفيف ، وهو نموذجي للدياتومات heterokont.

لن أتمكن من تحديد الكائن الحي على مستوى الأسرة. ومع ذلك ، قد ترغب في إكمال التحقيق الخاص بك من خلال النظر تحت الأمر "Pennales".

للحصول على معلومات عامة حول الدياتومات ، يمكنك زيارة https://en.wikipedia.org/wiki/Diatom Morphology والوصف المتاح من: https://books.google.co.uk/books؟id=xhLJvNa3hw0C&printsec=frontcover&source=gbs_ge_summary_r&cad = 0 # v = على الصفحة & q & f = خطأ

حظا طيبا وفقك الله


المعمل 3: البروتوزوان

تتكون الكائنات الحية التي يشار إليها باسم البروتوزوان (& ldquofirst Animals & rdquo) من مجموعة متنوعة من الكائنات حقيقية النواة (في الغالب) وحيدة الخلية. في الأوليات ، يتم تنفيذ جميع وظائف الحياة داخل حدود خلية واحدة. على الرغم من أنه من الواضح أنه لا توجد أعضاء أو أنسجة في الكائنات الأولية ، إلا أنها بعيدة كل البعد عن الكائنات الحية الدقيقة كما يتم وصفها في بعض الأحيان. في الواقع ، تظهر خلايا بعض الأنواع أكبر قدر من التعقيد والتنظيم الداخلي لأي كائنات حية على الأرض!

تشمل الخصائص العامة للأوليات: الحجم الصغير ، أحادي الخلية (لكن بعض الأنواع مستعمرة أو لها مراحل متعددة الخلايا) ، عارٍ أو مغطى بهيكل خارجي (اختبار) مكون من السيليكا أو كربونات الكالسيوم. مع أكثر من 64000 نوع حي ، تُظهر الكائنات الأولية تنوعًا رائعًا في الأشكال. على الرغم من وجودها أينما وجدت الحياة ، إلا أن الكائنات الأولية تتطلب دائمًا الرطوبة ، مما يقيدها في نطاق ضيق من الظروف البيئية في المياه العذبة أو الموائل البحرية أو التربة أو المواد العضوية المتحللة أو داخل أجسام النباتات والحيوانات. العديد من الأشكال مهمة من الناحية البيئية ، وتشكل روابط أساسية في سلاسل الأغذية وأنظمة التحلل.

حوالي 10000 نوع لها علاقات وثيقة (تكافلية) مع الحيوانات أو النباتات. قد تكون هذه العلاقات متبادلة (يستفيد كلا الشريكين) ، أو متكافئة (أحدهما يستفيد ، بينما الآخر لا يساعد ولا يتضرر) أو طفيلية (يستفيد الطفيلي من الأذى). في الواقع ، بعض أهم الأمراض التي تصيب الإنسان والحيوانات الأليفة سببها الطفيليات الأولية!

على الرغم من أن الطوائف الأولية كانت تُجمع في أربع مجموعات بناءً على نوع حركتها (أي ما إذا كانت مدفوعة بأسواط أو أهداب أو أرجل كاذبة أو تلك الأشكال التي تفتقر إلى العضيات الحركية) ، إلا أن هناك دليلًا من تحليل الجينات المشفرة للوحدة الفرعية الصغيرة تغيرت بشكل كبير (ولا تزال تتغير) مفاهيمنا عن الصلات والعلاقات التطورية ليس فقط لمجموعات الكائنات الأولية ولكن لجميع حقيقيات النوى وأجبرت على مراجعة تصنيف الكائنات الأولية. ما يلي ، إذن ، هو مقدمة لبعض من الكائنات الحية الأولية المعترف بها حاليًا بالإضافة إلى بعض المجموعات الأكثر أهمية والتجمعات غير الرسمية لهذه الكائنات.

ينتقل جميع أعضاء هذه الشعبة عن طريق إسقاطات تشبه السوط تتكون من أنابيب دقيقة مغلفة بامتداد غشاء البلازما. على الرغم من أن بعض أعضاء هذه الشعبة مثل الحنديرة ذاتية التغذية ، إلا أن عددًا من الأنواع غيرية التغذية تسبب أمراضًا خطيرة في البشر والحيوانات الأليفة. على سبيل المثال، المثقبية البروسية يسبب مرض النوم الأفريقي في البشر ومرض مرتبط بالحيوانات الأليفة. هذا المرض ، الذي ينتقل عن طريق لدغة ذبابة تسي تسي (Glossina spp.) ، يتسبب في وفاة حوالي نصف الأفراد المصابين وتلفًا دائمًا للمخ لدى العديد ممن بقوا على قيد الحياة.

طفيلي خطير آخر هو طفيلي euglenozoan المثقبية الكروزية الذي يسبب مرض شاغاس ورسكوو ، الذي يصيب ما يقرب من 2 إلى 3 ملايين شخص في أمريكا الوسطى والجنوبية ، يموت 45000 منهم كل عام. أخيرًا ، هناك عدة أنواع من الليشمانيا التي تنتقل عن طريق لدغات ذباب الرمل تسبب أمراضًا خطيرة للإنسان قد تصيب الكبد أو الطحال أو تسبب آفات مشوهة للأغشية المخاطية للأنف والحنجرة وتقرحات جلدية.

تضم هذه المجموعة الكبيرة والمتنوعة بعضًا من أكثر الكائنات الأولية تعقيدًا المعروفة مثل باراميسيوم, ستينتور, سبيروستوموم و فورتيسيلا. يكون التحرك دائمًا بواسطة الأهداب ، وجميع الأشكال متعددة النوى ، بها نواة كبيرة واحدة على الأقل (مسؤولة عن وظائف التمثيل الغذائي والتطور للخلية) وواحدة أو أكثر من النوى الدقيقة التي تشارك في التكاثر الجنسي). معظمها من الهولوزويك ولكن بعض الأشكال طفيلية وتسبب ضررًا لمضيفيها ، بما في ذلك البشر. يمكن أن تسبب العديد من الأنواع الطفيلية مشاكل خطيرة لأسماك الزينة والأسماك في حظائر المزرعة.

بالإضافة إلى عدد من العضيات المعقدة ، فإن العديد من الشركات العملاقة لها غطاء خارجي صلب منحوت يسمى أ قشرة. جزء لا يتجزأ من الحبيبات هي الأهداب بالإضافة إلى عدد من الهياكل الشبيهة بالخيوط تسمى trichocyst. عند التحفيز الميكانيكي أو الكيميائي ، يمكن تفريغ هذه الأكياس ثلاثية الشعر لإنتاج خيوط بروتينية لزجة طويلة تظل متصلة بالكائن الحي. على الرغم من أن وظيفة هذه الهياكل ربما تكون دفاعية ، إلا أنه كان من الصعب إثبات ذلك.

تضم هذه المجموعة العديد من الأنواع التي تشكل مكونًا كبيرًا من العوالق النباتية البحرية ، مما يجعلها من أهم المنتجين في البيئات البحرية. يمكن أن تؤدي السموم الناتجة عن الإسراف المفرط (الإزهار) لبعض هذه الأنواع البحرية إلى ما يسمى بالمد الأحمر الذي يسمم الأسماك أو يستقر في المحار ، مما يجعلها سامة للأكل! ينتج البعض الآخر مثل Noctiluca الضوء (تلألؤ بيولوجي). دينوفلاجيلات أخرى مهمة هي zooxanthellae التي تكون متبادلة في بناء الشعاب المرجانية الشفوية والمحار العملاق. بدون نشاطهم في التمثيل الضوئي ، ستتوقف الشعاب المرجانية (وكل ما يعتمد عليها) عن الوجود!

تحتوي هذه المجموعة على طفيليات داخلية ، تمتلك جميعها (على الأقل في مراحل نمو معينة) توليفة متخصصة من العضيات تسمى المركب القمي ، والتي تحتوي على هياكل تساعد في اختراق العائل. على الرغم من وجود عدد من اللقمات التي تسبب المرض للإنسان وحيواناتهم ، فإن أخطرها هو الملاريا ، التي تسببها في الإنسان أربعة أنواع من المتصورة التي تنتقل عن طريق لدغة أنثى بعوضة الأنوفيلة. هناك أكثر من 600 مليون شخص في العالم مصابون بهذا المرض ، وفي كل عام يموت حوالي 2 مليون شخص (معظمهم من الأطفال) من آثاره بشكل مباشر ويموت العديد غيرهم بشكل غير مباشر.

تشكل Parabasalids مجموعة أخرى من الكائنات الأولية ذات الجلد التي تفتقر إلى الميتوكوندريا. على الرغم من أن بعض الباراباساليد مثل تريشونيمفا العيش كمتبادلين في أحشاء النمل الأبيض والصراصير حيث ينتجون (بمساعدة الجراثيم الداخلية البكتيرية) الإنزيمات التي تكسر الخشب (السليلوز) في النظام الغذائي المضيف و rsquos ، والبعض الآخر من مسببات الأمراض البشرية.

المشعرات المهبلية هو بروتوزوان ينتقل عن طريق الاتصال الجنسي ويسبب التهابات المسالك البولية التناسلية. تعد الإصابة بـ T. vaginalis واحدة من أكثر الأمراض المنقولة جنسياً شيوعًا وقابلية للشفاء حيث يتم الإبلاغ عن خمسة ملايين إصابة جديدة كل عام في الولايات المتحدة وحدها وأكثر من 200 مليون في جميع أنحاء العالم! يتكاثر الطفيل لاجنسيًا من خلال الانشطار الطولي ، ولكن على عكس العديد من الأوليات الأخرى ، لا يحتوي الكائن الحي على مرحلة كيس كجزء من التكاثر.

تحتوي هذه المجموعة على الأميبات وغيرها من الأوليات التي تتحرك باستخدام امتداداتها المتنقلة من السيتوبلازم المسماة pseudopodia. تأتي هذه الأرجل الكاذبة في مجموعة متنوعة من الأحجام والأشكال ، وأكثرها شيوعًا تكون كبيرة وغير حادة. بعض الأنواع لها أرجل كاذبة رفيعة تشبه الإبرة ، في حين أن البعض الآخر يحتوي على أنواع تشكل شبكة شبيهة بالشبكة حول الكائن الحي. تعتبر التغذية في معظم أشكالها مجردة من خلال ابتلاع الفريسة (البلعمة).

الأميبات هي طيور أولية عارية توجد غالبًا في المياه الضحلة الصافية. على الرغم من أن معظم الأميبات تعيش بحرية ، وتتغذى على الكائنات الحية الصغيرة ذات الأرجل الكاذبة ، إلا أن بعض الأشكال طفيلية ويمكن أن تسبب مشاكل للبشر. على سبيل المثال ، يعتبر Entamoeba histolytica طفيليًا معويًا مهمًا للبشر الذين يعيشون في أجزاء من العالم ذات مرافق صحية سيئة. ينتقل الطفيل (الذي يسبب الزحار الأميبي) عن طريق شرب مياه ملوثة بالنفايات البشرية أو عن طريق تناول الخضار النيئة المغسولة بمثل هذه المياه. في ظل الظروف المناسبة ، يمكن أن تتكاثر مرحلة التغذية بشكل انفجاري ، وتؤدي إلى تآكل جدار الأمعاء وتسبب القرحة. بالإضافة إلى التسبب في الإسهال ، يمكن أن تخلق الإشريكية الحالة للنسج مشاكل خارج الجهاز الهضمي عن طريق غزو مجرى الدم. مرة واحدة في مجرى الدم يمكن أن تهاجر إلى المخ والكبد والرئتين - في كثير من الأحيان - مع نتائج خطيرة للغاية.

العفن الوحل هو مصطلح واسع يصف الكائنات الحية الشبيهة بالفطريات التي تستخدم الأبواغ للتكاثر. على الرغم من أن قوالب الوحل كانت تُصنف سابقًا على أنها فطريات ، إلا أنها لم تعد تُعتبر جزءًا من هذه المملكة. يشير اسمها الشائع إلى جزء من دورات حياة بعض هذه الكائنات حيث يمكن أن تظهر على شكل جيلاتيني ldquoslime & rdquo. تم العثور على قوالب الوحل في جميع أنحاء العالم وتتغذى على الكائنات الحية الدقيقة التي تعيش في أي نوع من المواد النباتية الميتة. لهذا السبب ، توجد هذه الكائنات عادة في التربة والمروج وعلى أرضية الغابة ، عادة على جذوع الأشجار المتساقطة الأوراق. ومع ذلك ، فهي شائعة أيضًا في المناطق الاستوائية في النورات والفواكه وفي المواقف الجوية (على سبيل المثال ، في مظلة الأشجار). في المناطق الحضرية ، توجد على نشارة أو حتى في قالب الأوراق في المزاريب. معظم قوالب الوحل أصغر من بضعة سنتيمترات ، ولكن قد تصل بعض الأنواع إلى أحجام تصل إلى عدة أمتار مربعة وكتل تصل إلى 30 جرامًا ، والعديد منها لها ألوان مذهلة مثل الأصفر والبني والأبيض.

توجد قوالب الوحل البلازمية الحقيقية في الطبيعة كمتصورة ، وهي كتلة متعددة النوى من البروتوبلازم يصل قطرها إلى عدة سنتيمترات ، بدون جدران خلوية وفقط غشاء خلوي للاحتفاظ بكل شيء. من النوى الفردية التي تتغذى عن طريق ابتلاع طعامها (البكتيريا في الغالب) مع pseudopodia في عملية تسمى البلعمة. وهكذا فإن العفن اللزج يبتلع طعامه ثم يهضمه.

عندما ينفد الطعام من البلازموديوم ، أو تصبح الظروف البيئية قاسية ، فإنها غالبًا ما تشكل أجسامًا مثمرة معقدة (غالبًا ما تكون جميلة) مصنوعة في الغالب من كربونات الكالسيوم والبروتينات التي تنتج جراثيم تسمح لها بالانتقال إلى مصدر غذاء جديد. تنبت هذه في وقت لاحق لتشكيل الأميبا غير النوى أو خلايا سرب سوطي. تندمج هذه لاحقًا ثم تنقسم بشكل انقسامي لتشكل بلازموديوم ، وتكمل دورة الحياة. أحد الأشياء الرائعة حول قوالب الوحل البلازمية هو أن ملايين النوى في بلازموديوم واحد تنقسم جميعها في نفس الوقت. هذا يجعل قوالب الوحل أدوات مثالية للعلماء الذين يدرسون الانقسام ، عملية الانقسام النووي.

من حين لآخر ، خلال فترات الأمطار ، تزحف بلازموديا كبيرة (يصل قطرها إلى بضعة أمتار) من الغابة إلى مروج الناس وحدائقهم. قد يكون البلازموديوم قبيحًا بالنسبة للبعض ، لكنه ليس ضارًا. تسبب قوالب الوحل ضررًا طفيفًا جدًا. تتغذى البلازموديوم على البكتيريا والجراثيم الفطرية وربما غيرها من الأوليات الأصغر. إن تناولهم للطعام هو أحد أسباب عدم اعتبار عفن الوحل من الفطريات. تنتج الفطريات إنزيمات خارجية (خارج أجسامهم) تعمل على تفكيك المواد العضوية إلى مواد كيميائية يتم امتصاصها من خلال جدران خلاياها ، ولا يتم تناولها.

على النقيض من قوالب الوحل البلازمية ، أو قوالب الوحل الخلوية ، أو الأميبات الاجتماعية ، تقضي معظم حياتها ككائنات وحيدة الخلية ، وطالما يوجد ما يكفي من الطعام (عادة البكتيريا) تزدهر الأميبا. ومع ذلك ، عندما ينفد الطعام ، فإنهم يرسلون إشارات كيميائية إلى الأميبات المحيطة ، والتي تتدفق بعد ذلك نحو نقطة مركزية ، وتشكل سبيكة مثل pseudoplasmodium متعدد الخلايا (& ldquofalse & rdquo plasmodium) ، والتي يمكن أن تهاجر بعد ذلك مثل كائن حي واحد. عندما تكون الظروف مناسبة ، يتوقف البلازموديوم الكاذب عن الهجرة ويشكل جسمًا مثمرًا متعدد الخلايا. تصبح بعض الخلايا جراثيم تنتشر ، بينما تشكل البقية خلايا ساق وظيفتها الوحيدة هي رفع الأبواغ في الهواء لتكون أكثر سهولة في التيارات الهوائية.

مختبر 3 01

تُظهر هذه الشريحة هيكلين خارجيين ، أو اختبارات ، من مجموعة من الكائنات الأولية البحرية تسمى المنخربات. تتراكم أصداف هذه الكائنات الأولية القديمة ، والتي تتكون من كربونات الكالسيوم ، في قاع البحر وتساهم بمرور الوقت في تكوين الطباشير والحجر الجيري. إن أجسام هذه المنخربات هي التي شكلت إلى حد كبير منحدرات دوفر البيضاء في إنجلترا والحجر الجيري المستخدم في بناء الأهرامات المصرية.

مختبر 3 02

تحتوي هذه الشريحة على عدد من الهياكل الخارجية ، أو الاختبارات ، للطوائف البحرية الأولية التي تسمى الراديولاريين. هذه الاختبارات الجميلة ، المتوافرة بكثرة في الرواسب البحرية في أجزاء كثيرة من العالم ، تتكون أساسًا من السيليكا.

مختبر 3 03

تُظهر هذه الشريحة عدة عينات ملطخة من بروتين الأميبا (بروتيوس كان إلهًا يونانيًا يمكن أن يتخذ أشكالًا مختلفة). تستخدم هذه الأوليات الكبيرة نسبيًا امتدادات متحركة من السيتوبلازم تسمى pseudopodia للحركة والتقاط الطعام. الطعام الذي يتم تناوله محاط بفجوة طعام ويتم هضمه بواسطة الإنزيمات. المناطق الواضحة التي تسمى الفجوات الانقباضية تجمع الماء الزائد من السيتوبلازم المحيط وتفريغها إلى خارج الجسم. لاحظ أيضًا النوى ذات اللون الداكن ، والتي تحتوي على كروماتين حبيبي وتتحكم في أنشطة هذه الكائنات أحادية الخلية.

صور الأميبات الحية

مختبر 3 04

تُظهر هذه الصورة المجهرية المتباينة الطور عينة من الأميبا الحية. لاحظ الفجوة الكبيرة المقلصة على الجانب الأيسر من الكائن الحي. تُستخدم هذه العضية لجمع وطرد المياه الزائدة التي تدخل الأميبا عن طريق التناضح.

مختبر 3 05

تُظهر هذه الصورة المجهرية التباين الطورية أميبا حية. لاحظ العديد من فجوات الطعام التي تتشكل داخل هذا الفرد "الذي يتغذى جيدًا" بالإضافة إلى الامتدادات المتحركة للجسم والتي تسمى الأرجل الكاذبة.

مختبر 3 06

تُظهر هذه الصورة المجهرية المتباينة الطورية أميبا حية أخرى تستخدم كاذبة (الزاوية اليمنى العلوية) لإحاطة عنصر فريسة. بمجرد الدخول ، سيدخل الطعام في فجوات الطعام ليتم هضمه.

مختبر 3 7

هذه شريحة من الهدبيات الكبيرة والمعقدة Paramecium caudatum ، والتي توجد غالبًا في الماء الذي يحتوي على البكتيريا والمواد العضوية المتحللة. لاحظ النواة الكبيرة على شكل الكلى التي تتحكم في معظم وظائف التمثيل الغذائي للكائن الحي. يقع بالقرب من الاكتئاب على النواة الكبيرة وغالبًا داخله هو النواة الصغيرة ، التي تشارك في التكاثر. كما هو الحال في أواليات المياه العذبة الأخرى ، تُستخدم فجوات مقلصة لإزالة الماء الزائد الذي يدخل الكائن الحي باستمرار عن طريق التناضح.

صور باراميسيا الحية

مختبر 3 08

تُظهر هذه الصورة المجهرية التباين الطورية عينتين حيتين من Paramecium caudatum. لاحظ الفجوة المقلصة الكبيرة في الطرف الأمامي للكائن الحي على اليمين (يُشار إليها بالسهم الأحمر). تستخدم هذه العضية لجمع وطرد المياه الزائدة التي تدخل عن طريق التناضح. لاحظ أيضًا الأخدود الفموي على سطح الكائن الحي. يؤدي هذا الاكتئاب إلى وجود فم خلوي دائم يسمى خلية خلوية تدخل من خلالها جزيئات الطعام إلى البروتوزوان.

مختبر 3 09

  1. فجوة الطعام
  2. أخدود الفم
  3. نواة صغيرة
  4. النواة الكبيرة
  5. الفجوة المنقبضة

تُظهر هذه الصورة المجهرية التباين الطورية عرضًا مكبّرًا لعينة من Paramecium caudatum. لاحظ النواة الكبيرة والنواة الصغيرة. تمتلئ الفجوات الانقباضية الثابتة الموضحة بالسوائل ليتم طردها قريبًا. لاحظ القنوات الشعاعية لهذه العضية التي تجمع السائل من السيتوبلازم. يمكن أيضًا رؤية فجوة الطعام في هذه العينة.

مختبر 3 10

تُظهر هذه الصورة المجهرية المتباينة الطور عرضًا مكبّرًا للغاية لعينة أخرى من Paramecium caudatum. لاحظ النواة الكبيرة الكبيرة ، والفجوات الغذائية واثنين من الفجوات الانقباضية الثابتة. يمكن رؤية القنوات الشعاعية التي تجمع الماء من السيتوبلازم وتوصيله إلى الفجوة بسهولة في هذه العينة.

مختبر 3 11

تعرض هذه الشريحة ملف باراميسيوم هذا هو الانقسام في عملية التكاثر اللاجنسي التي تسمى الانشطار الثنائي. خلال هذه العملية ، تنقسم النوى الصغيرة أولاً بشكل انقسامي ثم تعيد توزيع نفسها في جميع أنحاء السيتوبلازم ، وبعد ذلك تستطيل النواة الكبيرة إلى نصفين. في العينة الموضحة ، تم الانتهاء من تقسيم النواة الكبيرة إلى نصفين متميزين.

مختبر 3 12

تشير الأسهم الزرقاء إلى زوج من المترافقين

تعرض هذه الشريحة عددًا من العينات الملطخة من Paramecium تعمل في مراحل مختلفة من نوع من التكاثر الجنسي يسمى الاقتران. خلال هذه العملية ، يجتمع شخصان من أنواع تزاوج مختلفة معًا ويشكلان جسرًا هيوليًا بينهما. يتبع ذلك مجموعة معقدة من الانقسامات والانحطاط في النوى الكبيرة والنواة الدقيقة التي تؤدي في النهاية إلى تبادل في المواد الجينية بين المترافقات المماثلة للتكاثر الجنسي المرئي في الكائنات متعددة الخلايا.

مختبر 3 13

تشير الأسهم الحمراء إلى النوى الكبيرة

تُظهر هذه الشريحة عينتين ملطختين بهدية ستينتور الكبيرة على شكل بوق ، وهي من السكان المشتركين في بحيرات المياه العذبة والبرك والجداول. على الرغم من أنه يمكن لـ Stentor استخدام أهدابها للتنقل بنشاط عبر عمود الماء بحثًا عن الطعام ، إلا أنه غالبًا ما يتم العثور عليه مرتبطًا بساق طويلة بالعصي والأحجار والنباتات المغمورة حيث يستخدم مجموعة من العضيات الهدبية المعقدة لجذب جزيئات الطعام إلى فمه (cytostome). لاحظ النوى الطويلة والمطرزة بالخرز والتي يعكس حجمها الكبير على الأرجح المشكلات الخاصة للتحكم في مثل هذه الخلية الكبيرة.

صورة ستينتور الحي

مختبر 3 14

تُظهر هذه الصورة المجهرية التباين الطورية هدبًا حيًا يسمى Stentor. لاحظ الجسم الطويل على شكل بوق لهذه الخلية الأولية الكبيرة بشكل استثنائي وكذلك النواة الكبيرة المخرزة التي تحمل التحكم في جميع أجزاء هذه الخلية الطويلة والكبيرة.

مختبر 3 15

تُظهر هذه الشريحة العديد من العينات الملطخة للهدب Vorticella المرتبطة بقطعة صغيرة من الحطام بواسطة سيقان طويلة مقلصة. الأهداب حول الفم تخلق تيارات مائية تجذب جزيئات الطعام الصغيرة إلى الكائن الحي.

صورة حية Vorticella

مختبر 3 16

تُظهِر هذه الصورة المجهرية المتباينة طورًا Vorticella حيًا. لاحظ السيق الطويل الذي يتم من خلاله ربط هذا الهدب بالركيزة (قطعة من حطام البركة). على الرغم من أن هذا الساق يمكن أن يصل طوله إلى 3000 ميكرون ، إلا أنه يمكن سحبه في جزء من الثانية عند اضطراب الكائن الحي (انظر الصورة التالية في السلسلة).

مختبر 3 18

تُظهر هذه الشريحة ثلاث عينات ملطخة لأهداب كبيرة بشكل استثنائي تسمى Spirostomum. يمكن أن يصل طول هذا البروتوزوان الحلزوني الشكل إلى 3 مم وله جسم شديد الانقباض. مثل Stentor ، لديها أيضًا نواة طويلة ومطرزة.

مختبر 3 19

العيش في المسالك الهضمية لمعظم النمل الأبيض (وبعض الصراصير) هي أشباه مكافئة متبادلة من الجنس تريشونيمفا التي تساعد مضيفيها على هضم السليلوز والمكونات الهيكلية الأخرى للخشب. والمثير للدهشة أن الطوائف الأولية نفسها تفتقر إلى القدرة على إنتاج السليلاز ويجب أن تعتمد على مجموعة من البكتيريا المتعايشة مع بعضها البعض لإنتاج هذه الإنزيمات. في مقابل هذه الخدمة ، تستفيد الكائنات الأولية وأبنائها من الإمداد المستمر من السليلوز الغني بالطاقة ومن البيئة المناسبة لأمعاء المضيف.

ومن المثير للاهتمام ، على الرغم من ذلك تريشونيمفا يحتوي على عدد كبير من سوط حقيقيات النوى النموذجي الذي يحيط بمعظم الكائن الحي ، كما أنه يؤوي مجموعة من البكتيريا اللولبية المتحركة التي تتشبث بالمواقع الموجودة على البروتوزوان التي تفتقر إلى الأسواط. في الوقت الحاضر ، الباحثون غير متأكدين من الدور الذي تلعبه هذه الكائنات الحية في بيئة الأوالي و rsquos.

صور فوتوغرافية لسوط النمل الأبيض الحية

مختبر 3 20

تُظهِر هذه الصورة المجهرية المتباينة الطور الشكل الأولي الكبير Trichonympha الذي يسكن أمعاء النمل الأبيض البدائي. يمكن أيضًا رؤية سوطيات الحيوانات الصغيرة الأخرى وكذلك الأنواع البكتيرية على الشريحة.

مختبر 3 21

تُظهر هذه الصورة المجهرية التباين الطورية عرضًا أكثر تكبيرًا لسوطيات zooflagellate الكبيرة Trichonympha التي تعيش في أمعاء النمل الأبيض البدائي.

مختبر 3 22

تُظهر هذه الشريحة عينتين من الباراميسيوم اللتين تمت معالجتهما بصبغة خاصة تسلط الضوء على بنية تسمى الحبيبات ، وهي غطاء خارجي شبه صلب يوفر الدعم للأهداب التي تخرج من خلالها. على الشريحة ، يبدو أن هذه الهياكل تتكون من العديد من النتوءات والأخاديد.

مختبر 3 23

تُظهر هذه الشريحة مسحة من الدم تحتوي على سوط المثقبية البروسية التي تسبب مرض النوم الأفريقي لدى البشر. على الرغم من وجود نوعين فرعيين من الطفيلي يسببان أشكالًا مختلفة قليلاً من المرض ، ينتقل كلاهما عن طريق لدغة ذبابة تسي تسي (جلوسينا). يمكن رؤية العديد من المثقبيات المصبوغة باللون الأرجواني (المشار إليها بالسهام الزرقاء) بين كريات الدم الحمراء الدائرية ذات اللون الفاتح (خلايا الدم الحمراء). يمكن أيضًا رؤية الخلايا الليمفاوية الكبيرة ذات اللون الداكن (خلايا الدم البيضاء) على الشريحة.

مختبر 3 26

المثقبية الكروزية هو طفيلي من الأوالي يسبب مرض شاغاس و rsquo القاتل. يحدث انتقال العدوى من خلال لدغات القاتل أو & ldquokissing & rdquo bug (Triatoma) عندما يترسب البراز الذي يحتوي على مرحلة معدية من الطفيلي على سطح الجلد. نظرًا لأن اللدغة يمكن أن تسبب الألم والحكة ، فغالبًا ما يتم خدش البراز في الجرح أو يمكن التقاطه باليد ونقله إلى العين ، حيث يدخل من خلال الغشاء المخاطي. يمكن أن يحدث الانتقال أيضًا من خلال عمليات نقل الدم الملوثة.

يمثل داء شاغاس ورسكو أحد أعلى أعباء الأمراض في أمريكا اللاتينية. يصاب حاليًا ما يقرب من 16-18 مليون شخص ، يموت 50000 منهم كل عام. لا توجد حاليًا أدوية جيدة متاحة لعلاج المرض ، لذا فإن جهود التخلص من المرض تشمل في المقام الأول مكافحة النواقل وفحص الدم للوقاية من الإصابات الجديدة.

مختبر 3 27

Trichomonas vaginalis هو كائن أولي صغير لاهوائي ، باراباساليد ، يتحرك بمساعدة أربعة أسواط تشبه السوط تبرز من نهايتها الأمامية. كما أن لها سوطًا خامسًا يمتد للخلف من غشاء متموج يسمح للطفيلي بالالتصاق وتمزيق مجرى البول أو جدران المهبل ، مما يسبب التهابًا يساعد في تسريع وتكثيف العدوى. ثم يعيش البالغون (يطلق عليهم trophozoites) في المسالك البولية أو التناسلية ، حتى يتم تمريرهم إلى مضيفهم البشري التالي من خلال ممارسة الجنس غير المحمي.

مختبر 3 25

الليشمانيا هو مثقبي آخر يصيب البشر. مثل المثقبية البروسية ، يتطلب الطفيل مضيفين لإكمال دورة حياته: حيوان ثديي وحشرة. تسبب الليشمانيا نوعين من المرض: داء الليشمانيات الجلدي وداء الليشمانيات الحشوي. ينتج عن الأول عادةً آفات جلدية غالبًا ما تكون ذاتية الشفاء. هذا الأخير أكثر خطورة ، وغالبًا ما يؤدي إلى تدمير الخلايا البلعمية في الجهاز المناعي الذي يمكن أن يؤدي إلى عدوى ثانوية وموت في نهاية المطاف للمضيف البشري.

مختبر 3 24

تُظهر هذه الشريحة عينة دم مأخوذة من فرد مصاب بالملاريا ، والتي تسببها طفيلي Apicomplexan Plasmodium. على الرغم من أن معظم خلايا الدم الحمراء في اللطاخة تبدو طبيعية ، لاحظ أن الخلية مصابة بمرحلة تغذية داخل الخلايا من الطفيلي تسمى trophozoite (1). بعد التغذية على خلايا الدم الحمراء والهيموجلوبين rsquos ، يخضع الطفيل لشكل من أشكال التكاثر اللاجنسي يسمى الفصام (الانشطار المتعدد) ، مما يؤدي إلى إنتاج عدد من النوى التي تظهر في خلايا الدم الحمراء (2) أعلى وإلى يسار الخلية. تروفوزويت. بعد اكتمال الحركية الخلوية ، ستتمزق الخلية وتطلق خلايا وليدة مشكلة حديثًا تسمى الميروزويت. إن التدمير المتزامن للعديد من كريات الدم الحمراء وإطلاق محتوياتها هو الذي ينتج نوبات متعاقبة من الحمى والقشعريرة المميزة لهذا المرض المنهك.

مختبر 3 28

تُظهر هذه الصورة نموذجًا لطائر أولي كبير نسبيًا يسمى الأميبا. تستخدم الأميبات امتدادات متحركة من السيتوبلازم تسمى الأرجل الكاذبة (4) للحركة والتقاط الطعام. تحتوي البروتوزوان التي تشكل الأرجل الكاذبة على نوعين من السيتوبلازم ، جزء خارجي أكثر لزوجة يسمى ectoplasm وجزء داخلي أكثر سائلة يسمى الإندوبلازم. عندما يبدأ صوديوم الكاذب في التكون ، تظهر مساحة واضحة عند الحافة الأمامية للصوديوم الكاذب تسمى غطاء هيالين (5). بعد حدوث ذلك ، يبدأ الإندوبلازم بالتدفق إلى هذا الفضاء ، مما يتسبب في دفع الصوديوم الكاذب للأمام عبر الوسط. بالإضافة إلى دورها الحركي ، يمكن استخدام الأرجل الكاذبة لابتلاع الفريسة في عملية تعرف باسم البلعمة. بمجرد تناوله ، يدخل الطعام في فجوات الطعام (3) حيث يتم هضمه بواسطة الإنزيمات المنبعثة من الجسيمات الحالة. مناطق واضحة تسمى فجوات مقلصة (2) تجمع المياه الزائدة التي تدخل عن طريق التناضح من السيتوبلازم المحيط وتفريغها إلى خارج الجسم. لاحظ أيضًا النواة ذات اللون الداكن (1) ، والتي تتحكم في أنشطة هذا الكائن أحادي الخلية.

مختبر 3 29

تُظهِر هذه الصورة نموذجًا للطائر الأوليتي الهدبي الكبير والمعقد المعروف باسم Paramecium. غالبًا ما توجد هذه الكائنات أحادية الخلية في الماء الذي يحتوي على البكتيريا والمواد العضوية المتحللة. لاحظ النواة الكبيرة الكبيرة على شكل الكلى (1) التي تتحكم في معظم وظائف التمثيل الغذائي للكائن الحي. تقع بالقرب من (وغالبًا داخل منخفض على النواة الكبيرة) هي النواة الصغيرة (2) ، والتي تشارك في التكاثر. كما هو الحال في أواليات المياه العذبة الأخرى ، تُستخدم فجوات مقلصة (4) لإزالة الماء الزائد الذي يدخل الكائن الحي عن طريق التناضح. بالإضافة إلى هذه العضيات ، لاحظ الأخدود الفموي الهدبي (5) الذي يوجه الطعام إلى فتحة دائمة تسمى cytostome ، أو فم الخلية (6). وبمجرد دخوله الخلية ، يُحاط الطعام بفجوات غذائية (3) ويتم هضمه بواسطة الإنزيمات التي تفرزها الجسيمات الحالة. تحافظ بعض الأنواع أيضًا على فتحة دائمة للخارج تسمى سيتوبروكت ("فتحة الشرج"). يوجد تحت غشاء البلازما بنية صلبة ولكنها مرنة تسمى الحبيبية التي توفر الدعم للبروتوزوان ، مما يمكنها من الحفاظ على شكلها. جزء لا يتجزأ من هذه الحبيبية هي الأهداب التي تخرج من خلالها بالإضافة إلى العديد من الهياكل الشبيهة بالخيوط التي تسمى trichocyst (7). عند التحفيز الميكانيكي أو الكيميائي ، يمكن تفريغ هذه الأكياس الثلاثية (كما هو موضح في النموذج) لإنتاج خيوط بروتين طويلة لزجة تظل متصلة بالكائن الحي. يُعتقد أنه يمكن استخدام هذه الهياكل للدفاع.


مشروع علوم الحياة المجهرية

جرب البروتوزوا

إنهم & # 8217 ليسوا أجانب من كوكب آخر ، على الرغم من الاسم! البروتوزوا أحادية الخلية (أحادية الخلية). هم & # 8217re أيضًا حقيقيات النوى ، مما يعني أن نواة خليتهم محاطة بأغشية ، على عكس البكتيريا بدائية النواة. إنهم يعيشون في الماء (أو الأنسجة المائية داخل الجسم ، في حالة بعض الأمراض) ويصنفون في مملكتهم. ربما سمعت عن بعض هذه الطلائعيات من قبل: الأميبا ، الأوجلينا ، البراميسيوم ، الدينوفلاجيلات ، العفن الوحل ، وحتى معظم الطحالب. يمكنك إما جمع مياه البركة الخاصة بك للدراسة ، أو استخدام مجموعة الاستزراع.

ماذا تحتاج:

ماذا تفعل:

إذا كنت تستخدم مجموعة استنبات البروتوزوا ، فعادةً ما تبدأ الطلائعيات في الظهور بعد 24 ساعة مع أكثرها تنوعًا بعد حوالي 3 أيام. ستنمو كائنات مختلفة في أعماق مختلفة من كوب الماء الخاص بك ، لذلك خذ عينات من أجزاء مختلفة من الكوب.

  1. استخدم ماصة لأخذ عينة من الماء وضع قطرتين على شريحة مجهر عادية. تغطية القطرات بغطاء.
  2. افحص الشريحة بالمجهر الخاص بك بدءًا من 40x. معظم الطلائعيات لها ألوان قليلة ويصعب رؤيتها في الضوء الساطع ، لذا قم بتحويل الحجاب الحاجز المجهر إلى أدنى إعداد للضوء. سيستغرق الأمر الصبر لضبط الإضاءة وتركيز المجهر.
  3. في البداية سترى نقاطًا صغيرة جدًا تتحرك على الشريحة. يتحرك البعض بسرعة كبيرة ، والبعض الآخر يتحرك ببطء. يمكنك إبطائها للمراقبة عن طريق إضافة قطرة من ميثيل السليلوز ، أو يمكنك وضع القليل من الألياف من كرة قطنية على الشريحة. تعمل الألياف كعقبات لمنع الطلائعيات من الخروج من مجال الرؤية بسرعة كبيرة.
  4. بمجرد العثور على منطقة نشاط احتجاجي على الشريحة ، قم بتحويل التكبير إلى 100x أو حتى 400x لرؤيتها بشكل أفضل.
  5. إذا لم تظهر أي حيوانات ، فحاول مرة أخرى كل يوم بعد ذلك. يمكن أن تؤثر العديد من الظروف ، مثل عسر الماء ودرجة الحرارة وحموضة الماء ، على معدل نمو وتطور هذه الكائنات الحية. ستجد في كل يوم تاليًا أنواعًا مختلفة ومختلفة من البروتوزوا في ثقافتك. في البداية ، ستكون الأنواع الأصغر سائدة. مع مرور الأيام ستظهر الأنواع الأكبر. سترى أيضًا ظهور أشكال مختلفة من الطحالب. ستكون أنواع معينة أكثر شيوعًا من أعلى الكأس وأنواع أخرى من بالقرب من القاع. تدريجيًا ، ستتغير ظروف الغذاء والماء ، مما يؤثر على معدلات نمو وتطور الكائنات الأولية المختلفة.

عن ماذا تبحث:

نوع الحركة: تستخدم البروتوزوا طرقًا مختلفة للتنقل وعادة ما يتم تصنيفها بناءً على كيفية تحركها. الأميبا تستخدم ببطء أميبويد الحركة ، التي تتدفق جنبًا إلى جنب مع الأرجل الكاذبة ، أو الامتدادات المؤقتة الشبيهة بالقدم. يتدفق جزء من جدارها الخلوي إلى الخارج ، وكأنه قدم ، ثم يسحب بقية الأميبا بعدها. (هذه أيضًا هي الطريقة التي تتحرك بها خلايا الدم البيضاء في أجسامنا.) مخلوقات مثل الحنديرة تتحرك بسرعة السوطيات حركة. يدفعون أنفسهم بسوط أو سوطين يشبهان السوط. الطلائعيات الأخرى ، مثل الباراميسيوم ، تستخدم هدبي حركة. وهي مغطاة بخيوط صغيرة تشبه الشعر تسمى الأهداب والتي تنبض ذهابًا وإيابًا بشكل متناغم ، وتدفعها في الماء. قد يكون من الصعب رؤية الأسواط والأهداب — حاول تقليل الضوء الداخل إلى المجهر وزيادة التكبير.

طريقة الأكل: تختلف عادات الأكل بين الأوليات أيضًا. تستخدم بعض الطلائعيات ، مثل الأوجلينا أو فولفوكس (نوع من الطحالب) ، البلاستيدات الخضراء لتوليد الطاقة من خلال عملية التمثيل الضوئي ، على غرار النباتات. تعمل الحنديرة أيضًا كمحللات ، عن طريق إطعام الكائنات الحية الميتة. من ناحية أخرى ، تبتلع الأميبا فريستها بأقدامها الكاذبة وتجلب الطعام إلى فجوة الطعام (كيس يُخزن فيه الطعام حتى يتم هضمه). يكتسح البراميسيوم طعامه في أخدود الفم المبطن بالأهداب في المريء الذي ينغلق عندما يمتلئ ويصبح فجوة طعام.


من الفئران والرجال: هل المليارات ضحية للسيطرة على العقل بالتوكسوبلازما؟

التوكسوبلازما يقيم بصمت في أدمغة المليارات منا حول العالم. لفترة طويلة ، العدوى T. جوندي كان يعتبر غير ضار ولكن الأدلة الحديثة تشير إلى أنه يعدل مستويات الناقل العصبي ، ويغير الشخصية والسلوك لزيادة فرصته للانتقال إلى الأمام.

موجز سياسة الملاريا

الملاريا مرض معد يسببه كائن طفيلي وحيد الخلية ، المتصورةالذي يصيب الدم والكبد.

أصدقاء مع منافع أم استغلال؟

تم العثور على التعايش الداخلي - حيث يعيش أحد الأنواع داخل نوع آخر - في جميع أنحاء علم الأحياء الدقيقة. For example, Zooxanthellae are protozoa that live inside corals, the marine invertebrates that build coral reefs.

An ancient remnant inside the malaria parasite

Malaria is caused by protozoan parasites of the المتصورة جنس. These parasites are transmitted via mosquito bites, and several different species are known to infect humans. But look inside a المتصورة cell itself and you find something rather unexpected – a cellular structure that looks remarkably like a chloroplast.


نظرية الخلية

The microscopes we use today are far more complex than those used in the 1600s by Antony van Leeuwenhoek, a Dutch shopkeeper who had great skill in crafting lenses. Despite the limitations of his now-ancient lenses, van Leeuwenhoek observed the movements of protista (a type of single-celled organism) and sperm, which he collectively termed “animalcules.”

In a 1665 publication called ميكروغرافيا، صاغ العالم التجريبي روبرت هوك مصطلح "خلية" للتركيبات الشبيهة بالصندوق التي لاحظها عند رؤية أنسجة الفلين من خلال العدسة. في سبعينيات القرن السابع عشر ، اكتشف فان ليفينهوك البكتيريا والأوليات. مكنت التطورات اللاحقة في العدسات وبناء المجهر وتقنيات التلوين علماء آخرين من رؤية بعض المكونات داخل الخلايا.

By the late 1830s, botanist Matthias Schleiden and zoologist Theodor Schwann were studying tissues and proposed the unified cell theory, which states that all living things are composed of one or more cells, the cell is the basic unit of life, and new cells arise from existing cells. Rudolf Virchow later made important contributions to this theory.

Cytotechnologist

Figure 3. These uterine cervix cells, viewed through a light microscope, were obtained from a Pap smear. Normal cells are on the left. The cells on the right are infected with human papillomavirus (HPV). Notice that the infected cells are larger also, two of these cells each have two nuclei instead of one, the normal number. (credit: modification of work by Ed Uthman, MD scale-bar data from Matt Russell)

Have you ever heard of a medical test called a Pap smear (shown in Figure 3)? In this test, a doctor takes a small sample of cells from the uterine cervix of a patient and sends it to a medical lab where a cytotechnologist stains the cells and examines them for any changes that could indicate cervical cancer or a microbial infection.

Cytotechnologists (cyto = “cell”) are professionals who study cells via microscopic examinations and other laboratory tests. They are trained to determine which cellular changes are within normal limits and which are abnormal. Their focus is not limited to cervical cells they study cellular specimens that come from all organs. When they notice abnormalities, they consult a pathologist, who is a medical doctor who can make a clinical diagnosis.

Cytotechnologists play a vital role in saving people’s lives. When abnormalities are discovered early, a patient’s treatment can begin sooner, which usually increases the chances of a successful outcome.

In Summary: Microscopy

الخلية هي أصغر وحدة في الحياة. Most cells are so tiny that they cannot be seen with the naked eye. Therefore, scientists use microscopes to study cells. Electron microscopes provide higher magnification, higher resolution, and more detail than light microscopes. تنص نظرية الخلية الموحدة على أن جميع الكائنات الحية تتكون من خلية واحدة أو أكثر ، وأن الخلية هي الوحدة الأساسية للحياة ، وأن الخلايا الجديدة تنشأ من الخلايا الموجودة.


Under the microscope

With over 150 species to the Euglena family, there are minor differences among species. Many of the euglenoid species are somewhat tear-drop shaped. The blunt portion of the body is the anterior ‘head’ of the organism the more pointed part is the posterior section. Some pictures taken of Euglena specimens seem to show the posterior portion as being larger and more rounded. Other euglenoid species are ovoid in shape.

The only way to really tell the posterior from the anterior part of the body is where you locate the flagella. Euglenids have two flagella or whip-like structures located at the anterior end. The emergent flagellum tends to be longer than the other and is used to pull the organism through the water as it seeks out light or food. Sometimes the smaller of the two flagella may be seen but many times it is contained inside the Euglena in a reservoir. The flagella are usually best seen under a high-powered microscope.

Euglenids have no rigid cell wall to maintain a solid shape. The cytoplasm and organelles of the organism are held in by a plasma membrane. Under that and giving the outside ‘skin’ of the protozoa a ridged appearance is a pellicle. Viewed under a high power microscope, the pellicle has the contours of corrugated cardboard with crinkles and indentations. The raised portions of the pellicle are strips composed of protein and with a microtubule in each one. In some species of Euglena the strips extend the length of the organism’s body. In some euglenids, the pellicle ridges appear more like a corkscrew design. In Euglenas with that sort of strip placement, the organism can sometimes be seen wriggling through the water instead of using its flagella for locomotion. The wriggling movement is called metaboly.

In euglenids which photosynthesize, an eyespot or stigma may be seen in the anterior portion of the organism’s body. The eyespot appears red under the microscope and is used by the creature to sense where to move to get the most light. It is one of the most easily identifiable parts of a euglenid.

When you examine euglenids under the microscope, you will see a number of different-shaped spots throughout their bodies. These are the chloroplasts, paramylon bodies, contractile vacuoles and nucleus.

Not all euglenids are green. The ones that are have chloroplasts which contain chlorophyll a and sometimes chlorophyll b. Chlorophyll a is responsible for a green grass type of hue and is most responsible for photosynthesis. Sometimes a euglenid’s chloroplasts will contain chlorophyll b which is more of a bluish-green hue and increases the ability of the organism to absorb light by increasing the spectrum of light which can be utilized. Some euglenids which are colorless or reddish in color have carotenoids as pigments which display as yellow, orange or red. Chloroplasts can be just about any shape and size but are easy to see throughout the Euglena’s body.

The euglenids which have the added ability to ingest rotifers, paramecium or amoebas have gullets. This is used mainly when the euglenid is in darker conditions for prolonged periods of time and cannot photosynthesize.

You may also see several paramylon bodies, organelles which store starch-like carbohydrates in the form of a glucose compound produced through photosynthesis and used for reserve energy.

Contractile vacuoles in the euglenid’s body collect excess fluids and transfer them to the external environment. Without those organelles, the creature would grow too large for its plasma membrane and explode. These are found in freshwater euglenids.

The most important organelle in the euglenid’s body is the nucleus. It is a large circular structure found somewhere between the center to posterior of the organism. If your microscope is powerful enough, you may see one or more nucleoli or endosomes inside the nucleus and dot-like chromosomes sprinkled throughout the organelle. The nucleus regulates the activities of the euglenid and contains the DNA blueprint for reproduction.

Watch any video of the movement of a Euglena through the water and you will be captivated by this aquatic microorganism with the red eyespot.


The Biology and Identification of the Coccidia Apicomplexa of Rabbits of the World

مؤلف: Donald W. Duszynski,Lee Couch
Publsiher: Elsevier Science Limited
Total Pages: 340
يطلق: 2013
ISBN 10: 9780123978998
ردمك 13: 0123978998
لغة: EN, FR, DE, ES & NL

The Biology and Identification of the Coccidia (Apicomplexa) of Rabbits of the World is a taxonomic summation of a damaging intestinal parasite found in rabbits and transmissible to other species, including humans. This book conceptually and historically summarizes the world's literature on the parasite and also provides a quick guide to isolation procedures, identification, strategies for management, and available chemotherapy. It is a vital source of knowledge about coccidia's real and potential transmission to humans, which can lead to dangerous health problems, like severe dehydration, vomiting, lethargy and even death. Coccidiosis is an intestinal disease that affects several different animal species, including canines and humans, and is one of the most prevalent protozoal infections in North America. The causative agent is a protozoan that has the ability to multiply rapidly and cause major damage in the intestinal wall, rupturing the cells of the intestinal lining. The final stage, the oocyst, is extremely resistant to environmental stress and is difficult to completely remove from the environment. Oocysts are frequent contaminants of feed and water and when the sporulated oocysts are ingested by other animals, they start the life cycle over in the new host. With the demand for rabbits in scientific research and for rabbit meat for human consumption increasingly globally each year, rabbits are of epidemiologic significance for laboratory workers, university researchers, veterinarians, pet owners, and breeders. Evaluates the scientific and scholarly merit of each of the publications written about coccidian from every rabbit species, providing a complete historical rendition A treatise for the identification of coccidia and their treatment as needed Written in a style that can be understood by most educated lay persons and laboratory workers Written by the first ranked author team among the world-class parasitologists who study coccidia Combined in one single source, this book follows the gold standards in coccidian biology and identification Brings all that information together in one volume and solves the problems faced by researchers, veterinarians, students and others in trying to find and navigate through this scattered literature


Identification of protozoa under microscope - Biology

prepared slides of paramecium, amoeba, euglena, stenor, radiolarians

The Kingdom Protista are single-celled organisms that have a true nucleus (eukaryotic). Protista may be either autotrophic or heterotrophic. Movement by protists is dependent upon certain physical characteristics. Some protozoa have pseudopodia which can extend the cell membrane and push forward or surround a food particle, such as an amoeba does. A protist that possesses a single tail-like structure is called a flagellate. The flagellum will beat back and forth and propel the organism through the water, examples are trypanosome and trichosomes. Some Protozoa are covered with tiny hair-like structures called cilia which move back and forth quickly propelling the organisms through the water. A paramecium is an example of a ciliate. Some Protozoa have axopodia, or pencil-like structures, that help them to be planktonic or floaters in the water. Radiolaria are marine examples of protozoa containing this feature.

There are many debates about whether protozoa are all one-celled organisms or whether they are all one-celled organisms that are heterotrophs. Scientists who study these groups, debate on how to classify some of these organisms, like euglena and dinoflagellate. With more study these groups will be better understood.

Most protozoa are helpful in that they are important in lower levels of the food chain. They provide food for living things such as snails, clams, and sponges. Some protozoa are capable of causing diseases in humans and other animals. Some diseases caused by protozoa in humans are malaria, black fever, sleeping sickness, and some types of diarrhea.

Protista are single-celled organisms that have a true nucleus (eukaryotic). Protista may be either autotrophic or heterotrophic. Movement in protista is dependent upon certain physical characteristics. Some protozoa have pseudopodia which can extend its cell membrane and push itself forward or surround a food particle. A protozoa that possesses a single tail-like structure is called a flagellate. The flagella will beat back and forth and propel the organism through the water, examples are trypanosome and trichosomes. Protozoa that are covered with tiny hair-like structures called cilia move back and forth quickly propelling the organism through the water. Paramecium are examples of ciliates. Protozoa that have axopodia, or pencil like structures, help these protozoa to be planktonic or floaters in the water. Radiolaria are marine examples of protozoa containing this feature.

There are many debates about whether protozoa are all one celled organisms or whether they are all one celled organisms that are heterotrophs. Different textbooks will no doubt show this difference of opinion. Scientists who study these groups are not sure where they place some of these organisms, like euglenas, dinoflagellates, and many others. With more study the position of these groups will be understood more, but until then, give your students the sense that this is a not well understood portion of biology.

Most protozoa are helpful in that they are important in lower levels of the food chain. They provide food for living things such as snails, clams, sponges. Some protozoa are capable of causing diseases in humans and other animals. Some diseases caused by protozoa in humans are malaria, black fever, sleeping sickness, and some types of diarrhea.

Students will use the light microscope to look at prepared samples. Have them follow the lab procedures on their activity sheet. The first lab will consist of prepared samples and the second lab 9 will have students look at live materials.


Permanent staining of fecal smears

The samples (e.g. feces, duodenal aspirates, rectosigmoidoscopy specimens and other materials) that are meant for permanent staining must be fixed immediately after passage to maintain the morphological characteristics of the intestinal protozoa and obtain a correct staining .

Schaudinn s fixed specimen

- Smear the specimen on a slide using a wood, plastic or glass applicator rod, making thicker (rolled) and thinner (smeared) areas.

- Without allowing the smear to dry, place the slide immediately in Schaudinn's working solution (R5) for at least 1 hour (overnight is better).

It is recommended to fix the remaining material in SAF or PVA solutions.

For trichrome or iron-hematoxylin staining of specimens fixed in Schaudinn's solution, proceed from point 1 below.

Trichrome stain (Wheatley's modification of the Gomori method)

Preparation of smears from PVA-fixed specimens

Fix the specimen (after homogenization) in PVA solution for at least 30 min. Stir well, then remove 1-2 ml of the suspension with a pipette, pour it onto a sheet of paper towel and allow the excess PVA to be absorbed for 3 min (do not skip this step). With an applicator rod (plastic, wood or glass), take the fecal material from the paper towel and put it on a slide. Then, with the same rod, form thicker (rolled) and thinner (smeared) areas on the slide. Leave to dry for at least 2 h in a 37 C incubator or overnight at room temperature. These slides can be stored for at least one month at room temperature.

For occasional use (or when few slides are stained at one time), staining can be carried out using a Coplin jar.

1- Place slides in iodine tincture for 5 min. (R14)

2- Place slides in 70% ethanol for 2 min.

3- Place slides in 50% ethanol for 2 min.

4- Place slides in undiluted stock trichrome stain for 15 min. (R15)

5- Drain slides after staining by blotting on paper towel and dip them for a few seconds in destaining solution (R16) (only 2 immersions).

6- Place in 95% ethanol, shaking for 30 s.

7- Place in absolute ethanol for 5 min.

8- Place in absolute ethanol for 5 min.

9- Place in xylene for 5-10 min.

Mount in resinous mounting medium or using the alternative method (انظر أدناه).

Preparation of smears from SAF-fixed specimens

1- Fix the thoroughly homogenized fecal specimen in SAF solution (R4) for at least 30 min.

2- Mix well, take 2-3 ml of suspension and allow to sediment spontaneously in a centrifuge tube for less than 1 minute, then pour off the supernatant into another tube.

3- Fill the tube with saline and centrifuge for 2 min at 500 x ز. Discard the supernatant and repeat washing at least 4-5 times.

4- After the last centrifugation, discard all the saline.

5- Carefully homogenize the washed sediment with a rod, take a drop of sediment and mix it with a drop of Mayer's albumin (R17) previously placed on a slide.

6- With the same rod, smear the material on the slide and form thicker (rolled) and thinner (smeared) areas. Leave to dry completely at room temperature generally a few hours are enough, depending on the amount of saline present in the sediment, on the quantity of Mayer's albumin, and on the room temperature and humidity. Do not stain the slides if they are still shiny or wet, because the material can detach from the slide during staining. Slides can be stored for at least two weeks at room temperature away from dust.

7- Stain slides with trichrome as described for PVA-fixed specimens, above, starting from point 2.

Microscopic examination and interpretation

Even if all the procedures described above are carried out properly, unexpected problems may generate disappointing results and make the preparation difficult to read. Therefore, for all permanent staining procedures, it is important to include a control slide with known protozoa (preferably a specimen containing Dientamoeba fragilis , for its particularly delicate nuclear structure). However, control slides stored for a long time may dehydrate (the moisture of the specimen is retained by the glycerin within Mayer's albumin). If this occurs, the result is a pale staining of the control slide. If specimens with known protozoa are not available, include a negative control slide of PVA- or SAF-fixed stool without protozoa, but to which a buffy coat of white blood cells has been added.

Examine the smear at low power (40x objective) identifying the areas of uniform thickness in order to assess the overall staining. Then, proceed to oil immersion observation (100x objective) and examine at least 300 microscopic fields before concluding that a specimen is negative.

- In well-stained smears, the chromatic features of the organisms stand out against the background of the preparation, making them more visible than with hematoxylin staining

- The cytoplasm of the trophozoites is stained blue-green or green, although in some cases it takes on purple shades

- Entamoeba coli cysts show a brighter red-purple color than cysts of Entamoeba histolytica/dispar/moshovskii and other amoebae

- Cysts are often surrounded by a clear halo because they shrink during the fixing process: to determine the original size of the cyst, always measure the diameter of the surrounding halo

- Nuclear chromatin, the karyosome and inclusion bodies (chromatoid bodies, red blood cells and bacteria) stain red or red-purple, as do the fibrils ( flagellar remnants) of flagellates

- Charcot-Leyden crystals stain red

- Yeast and Blastocystis stain green, the latter with red nuclei on a thin rim of cytoplasm

- Vacuoles or glycogen masses do not stain.

Trichrome stain provides best results using specimens fixed with Schaudinn's solution or PVA the use of SAF fixative gives poor results.

Notes on trichrome staining

- Slides can remain for 24 hour in the solutions indicated in points 2, 8 and 9 without affecting the quality of the staining.

- The removal of mercuric chloride from specimens fixed with Schaudinn's solution or PVA is achieved using an iodine tincture. This solution should be made fresh at least weekly or whenever its color becomes clear. If this is not done, a highly refractive precipitate of crystals or granules will form and make smear examination difficult or impossible.

- Incomplete removal of iodine causes a predominant green staining of the smear. Change frequently the 70% ethanol solution at point 2 or lengthen the time of this step.

- The transition from point 3 to point 4 of the staining process may cause ethanol to enter the trichrome stain, diluting it. To avoid this, drain smears on a paper towel before placing them in the trichrome stain.

- To check the quality of the staining solution, tilt the tank slightly to see if the moist rim is redif not, regenerate the solution by leaving the tank uncovered overnight to evaporate off any ethanol present then refill to the original level with new stock trichrome solution.

- Although trichrome stain is progressive, the best results are obtained with regressive staining, i.e. using a destaining solution. Excessive destaining (it is easy to over-differentiate - point 5) causes poor differentiation of the parasites, even when the specimens stain well. For example, the granular nuclear chromatin appearance of Dientamoeba fragilis will be difficult to detect and may generate confusion with other amoeba species (e.g. Entamoeba hartmanni ). Contrarily, in over-stained specimens (little differentiation), the nuclear chromatin may appear as a compact blob, not formed of granules, thereby causing confusion with Endolimax nana أو Iodamoeba buetschlii .

- In the final dehydration phase, the ethanol solution should be absolute (100%), i.e. completely free of water. If, after the passage from 100% ethanol to xylene , the latter becomes opaque, dip the slide once more in new 100% ethanol and then in new xylene .

- If the result of the staining is unsatisfactory and if it is not possible to get a new specimen, restain the slides as follows:

o Place smears mounted with resinous mounting medium into xylene for at least 12-24 hours, until the coverslips detach from the slides

o Dip slides in absolute ethanol (1 min), 95% ethanol (1 min), 70% ethanol (1 min) and finally in 50% ethanol (1 min)

o Destain smears in 10% acetic acid for several hours

o Wash by soaking in tap water for 3 min (change at least 4-5 times)

o Dip in 70% ethanol (1 min) and 50% ethanol (1 min)

o Now repeat trichrome staining from point 4.

If you wish to examine the smear with the oil immersion objective, immediately after staining without permanent mounting – which requires a waiting time of at least 24-36 hours for drying, an alternative mounting method can be used and permanent mounting can be carried out later.

Alternative mounting method

- Remove slides from the xylene and leave to air dry in horizontal position.

- Place some drops of immersion oil on the smear, allow the oil to spread evenly and leave for about 10 min

- Place a coverslip, add one more drop of immersion oil, and examine at high power (100x objective).

Never examine smears without coverslip. After dehydration, the stained fecal smears are very fragile. In addition, without using a protective coverslip, the lens of the high power objective (100x) can be irreparably damaged. In any case, the transparency and brightness of the preparation mounted with this alternative method are lower than that achieved with permanent mounting.

Iron- hematoxylin stain

Hematoxylin is a natural stain extracted from Hematoxylon campechianum خشب. It consists of colorless crystals lacking staining ability, which is then acquired after oxidation and transformation into hematein .

Many hematoxylin staining methods are available. Regressive methods are time consuming and require experience, especially in the destaining step the preparation must be checked several times under the microscope when wet, in order to follow the destaining and differentiation processes. These methods, however, are able to reveal fine cytological details with excellent results. On the other hand, progressive methods are rapid, do not involve destaining , and provide nuclear staining which is sufficient for identifying amoeba species.

Preparation of smears

Specimens fixed in Schaudinn's solution (see trichrome stain)

Specimens fixed in SAF (see trichrome stain)

Specimens fixed in PVA (see trichrome stain)

Staining with iron-hematoxylin gives excellent results with specimens fixed with SAF or Schaudinn's solution.

Iron- hematoxylin stain (Heidenhain's regressive method)

For occasional use (or when few slides are stained at one time), staining can be carried out using a Coplin jar.

For specimens fixed in Schaudinn's solution, proceed from point 1.

For specimens fixed in PVA, proceed from point 1.

For specimens fixed in SAF, proceed from point 2.

1- Dip slides in iodine tincture for 5 min (R14).

2- Place slides in 70% ethanol for 5 min.

3- Place slides in 50% ethanol for 2 min.

4- Wash well with distilled water.

5- Place slides in hematoxylin working solution (R20) for 10 min .

6- Place slides under running tap water (best if tepid) for 10 min.

7- Differentiate slides (one by one) in destaining solution (R21) أو (R22) for 30 s.

8- Wash with tap water and check the wet slide under the microscope (40x objective): if the result is unsatisfactory, replace the slide in destaining solution and then in tap water, until the desired result is achieved. If differentiation in destaining solution is excessive (slide too destained or poor differentiation of parasites), restain with hematoxylin starting from point 5.

9- Place slides under running tap water (best if tepid) for 10 min.

10- Place slides in 95% ethanol for 5 min.

11- Place slides in 100% ethanol for 5 min.

12- Place slides in 100% ethanol for 3 min.

13- Place slides in xylene for 5-10 min.

Mount slides with resinous mounting medium or use the alternative mounting method (see above).

During staining, smears should never dry.

Microscopic examination and interpretation

- Parasites stain blue to black, according to how old the hematoxylin working solution is

- Trophozoitic cytoplasm stains dark blue, gray or black

- Cysts stain dark blue, gray or black, and very often are surrounded by a clear halo which should be considered when measuring cyst size

- Peripheral nuclear chromatin, the karyosome and inclusion bodies (chromatoid bodies, red blood cells and bacteria) stain dark blue, gray or black, as do the fibrils (flagellar remnants) of flagellates

- Charcot-Leyden crystals stain black

- Yeast and Blastocystis stain dark blue, gray or black, the latter with the nuclei darker on the thin rim of cytoplasm

- Glycogen does not stain, but a clear area should be seen.

Examine at least 300 microscopic fields (100x objective) before considering the specimen negative.

Mayer's hematoxylin stain (rapid progressive method)

Albeit not providing the same quality results as the regressive method, the rapid progressive method can be a valid alternative for beginners.

Sample preparation (see above).

1- Place slides in 70% ethanol for 5 min and then in 50% ethanol for 1 min.

2- Wash slides in tap water for 5 min.

3- Quickly wash slides twice in distilled water.

4- Place slides in Mayer's hematoxylin (R23) for 40 s. This time must be checked for every new stock solution.

5- Wash slides with running tap water for 5 min.

6- Place slides for 30 s in a solution of water and ammonia (R24).

7- Place slides in 95% ethanol for 1 min then in new 95% ethanol for 30 s.

8- Dehydrate slides in 100% ethanol for 5 min.

9- Place slides in xylene for 5-10 min.

10- Mount slides using a resinous mounting medium or the alternative mounting method.

During staining, slides should never dry.

With this method, all parasites stain blue.

Notes on trichrome and hematoxylin staining

These staining methods were developed in order to make vegetative forms of intestinal protozoa (amoebae, flagellates) easy to recognize and identify. In specimens containing cysts, the results can be poor due to the presence of collapsed, shrunken, deformed or over-stained forms. This is not the result of bad staining, but it is due to the fact that cysts are poorly fixed in Schaudinn's , PVA and SAF solutions.

During fixation, vegetative forms may be in any one of the different phases of the cell cycle, including the rest period (interphase) and the various phases of nuclear division. Therefore, it is possible to observe forms with 2 nuclei or an apparently deformed nucleus undergoing division (anaphase).

See Trophozoite division (mitosis)

Giemsa and Field stains

These stains are used only on fresh, unfixed specimens (e.g. feces, duodenal aspirates) to identify trophozoites of Dientamoeba fragilis or of flagellates, with excellent results. Other intestinal protozoa are difficult or impossible to identify.

Giemsa stain

1- Spread the specimen on a slide to obtain a thin smear if the feces have a normal consistence, dilute with saline (not with water).

2- Allow the slide to air dry.

3- Fix in 100% methanol for 1 minute.

4- Allow the slide to air dry.

1- Place the slides in 10% Giemsa solution (R33) for 30 minutes.

2- Wash slides well with tap water.

3- Allows the slides to air dry.

Put some drops of immersion oil onto the stained slide, allow the oil to spread evenly and leave for about 10 min. Cover with a coverslip and add one more drop of immersion oil. Then, examine at high power (100x objective). Do not examine specimens without a coverslip because the lens of the objective can be damaged.

- Nuclei stain red-purple or violet

- Cytoplasm stains blue or blue-gray.

Field stain

Sample preparation (see Giemsa stain)

1- Flood slide with 1 ml Field stain B (diluted 1:4 with distilled water).

2- Immediately add 1 ml Field stain A and, with the same pipette, mix the two stains together.

4- Wash slide well with tap water and allow to air dry.

Microscopic examination and interpretation (see Giemsa stain)

Ziehl-Neelsen stain, modified (hot method)

This staining method highlights the acid resistance of intestinal coccidia .

1- The fecal sample is spread on the slide to produce a thin smear. For this procedure, use feces fixed in formalin or SAF or feces that have previously been concentrated (in the last case, to recover كريبتوسبوريديوم oocysts , all centrifugation phases must be lengthened by at least 10 min).

2- Allow the slide to air dry.

3- Fix in 100% methanol for 1 minute.

4- Allow the slide to air dry.

5- Flood slide with carbol-fuchsin working solution (R25) for 5 minutes, gently heating on a Bunsen flame or ethanol lamp. Do not boil or dry the staining solution if it dries, add more staining solution to the slide.

6- Decolorize with acid solution (R26) until the stain (red-pink) no longer drips from the slide.

7- Wash slide well with tap water.

8- Flood slide with a methylene blue solution (R27) for 30 s.

9- Wash well with tap water, and allow the slide to air dry.

Microscopic examination and interpretation

Examine slides at low (40x objective) and high (100x objective) power. Oocysts stain pink to red or deep purple.

كريبتوسبوريديوم : inside the roundish or oval oocysts , black punctiform or comma-like formations (sporozoites) are seen the bright red color of oocysts is readily recognizable against a blue background.

Isospora belli : in mature oocysts, two red sporocysts are visible, surrounded by a clear halo separating them from the oocyst wall.

Cyclospora : on average only one oocyst out of four becomes stained, taking on a red to pale pink color the other oocysts can be seen as roundish and colorless ghosts . To stain all the oocysts , a safranin method can be used which, however, requires a microwave oven.

Kinyoun stain (cold method)

This stain highlights the acid resistance of intestinal coccidia .

1- Spread stool, formalin- or SAF-fixed specimens, or concentrated samples to obtain a thin smear. (If it is necessary to recover كريبتوسبوريديوم oocysts , all centrifugation phases of the concentration method must be lengthened by at least 10 min).

2- Allow the slide to air dry.

3- Fix in 100% methanol for 1 minute.

4- Allow the slide to air dry.

5- Flood the slide with Kinyoun carbol-fuchsin solution (R28) for 5 min.

6- Decolorize with acid solution ((R29) until the stain (red-pink) no longer drips from the slide.

7- Wash slide well with tap water.

8- Flood slide with a methylene blue solution (R30) for 30 s.

9- Wash the slide well with tap water and allow to air dry.

Microscopic examination and interpretation

Examine slides under the microscope at low (40x objective) and high (100x objective) power. Oocysts stain pink to red or deep purple, but less bright than with the modified Ziehl-Neelsen hot method.

Weber's trichrome stain for microsporidia

تحضير

- Prepare a thin smear with 10 μl of feces fixed with 10% formalin or SAF. Specimens that had been concentrated with Ritchie's method cannot be used

- Fix in 100% methanol for 10 minutes and allow the slide to air dry.

Staining procedure

1- Place the slide for 90 minutes in modified trichrome solution (R31)

2- Destain in acid alcohol solution for 5-10 s (R32)

3- Briefly rinse in 95% ethanol for 2-4 s (2 immersions)

4- Dehydrate twice in absolute ethanol for 5 minutes

5- Place slide in xylene for 5 minutes (twice)

6- Mount with resinous mounting medium or the alternative mounting method.

Microscopic examination and interpretation

Carefully examine at least 300 microscopic fields with the oil immersion lens (100x objective). Microsporidia spores are refractile , oval, with reddish-pink walls, but they are difficult to identify due to their small size. Sometimes the content of the spore does not stain at all, while in other cases a reddish-pink diagonal or equatorial band can be seen. The background of the preparation, comprising bacteria and fecal debris, stains weakly green.

To avoid erroneous interpretations, use of a positive control is mandatory.

Giemsa stain for microsporidia

Sample preparation (see Weber's trichrome staining for microsporidia )

Staining procedure

1- Dip fixed slides in Giemsa solution (R33) for 35 minutes

2- Wash with running tap water for 30 s

3- Allow slides to air dry.

Microscopic examination and interpretation

Carefully examine at least 300 microscopic fields with the oil immersion lens (100x objective). When present, microsporidia spores appear either isolated or clustered in groups. The nucleus stains red, the cytoplasm pale blue a clear intracytoplasmic vacuole is visible. To avoid erroneous interpretations, use of a positive control is recommended.


Microscopic imaging without a microscope? New technique visualizes all gene expression from a tissue sample

The 30,000 or so genes making up the human genome contain the instructions vital to life. Yet each of our cells expresses only a subset of these genes in their daily functioning. The difference between a heart cell and a liver cell, for example, is determined by which genes are expressed—and the correct expression of genes can mean the difference between health and disease.

Until recently, researchers investigating the genes underlying disease have been limited because traditional imaging techniques only allow for the study of a handful of genes at a time.

A new technique developed by Jun Hee Lee, Ph.D., and his team at the University of Michigan Medical School, part of Michigan Medicine, uses high-throughput sequencing, instead of a microscope, to obtain ultra-high-resolution images of gene expression from a tissue slide. The technology, which they call Seq-Scope, enables a researcher to see every gene expressed, as well single cells and structures within those cells, at incredibly high resolution: 0.6 micrometers or 66 times smaller than a human hair—beating current methods by multiple orders of magnitude.

"Whenever a pathologist gets a tissue sample, they stain it and look at it under the microscope—it's how they diagnose disease," explained Lee, an associate professor in the Department of Molecular & Integrative Physiology. "Instead of doing that, with our new method, we have made a microdevice that you can overlay with a tissue sample and sequence everything within it with a barcode with spatial coordinates."

Each so-called barcode is made up of a nucleotide sequence—the pattern of A, T, G, an C—found in DNA. Using these barcodes, a computer is able to locate every gene within a tissue sample, creating a Google-like database of all of the mRNAs transcribed from the genome.

"People have been trying to do this with other methods, such as microprinting, microbeads or microfluidic devices, but because of technological limitations, their resolution has been a distance of 20-100 micrometers. At that resolution you can't really see the level of detail needed to diagnose diseases," Lee said.

Lee adds that the technology has the potential to create an unbiased systematic way to analyze genes.

"Whenever we do science, we had to make a hypothesis about the role of two or three genes, but now we have genome-wide data at the microscopic scale and much more knowledge about what's going on inside that patient or model animal's tissue."

This knowledge could be used to provide insight into why certain patients respond to certain drugs while others do not, said Lee.

The team demonstrated the effectiveness of the technique using normal and diseased liver cells, successfully identifying dying liver cells, their surrounding inflamed immune cells and liver cells with altered gene expression.

"This technology actually showed many known pathological features that people have previously discovered but also many genes that are regulated in a novel way that was unrecognized previously," said Lee. "Seq-Scope technology, combined with other single cell RNA sequencing techniques, could accelerate scientific discoveries and might lead to a new paradigm in molecular diagnosis."


شاهد الفيديو: أشياء لا تريد رؤيتها تحت المجهر (يوليو 2022).


تعليقات:

  1. Hoc

    إنه مختص ويمكن الوصول إليه ، لكن يبدو لي أنك فاتتك الكثير من التفاصيل ، حاول الكشف عنها في المشاركات المستقبلية

  2. Filbuk

    في ذلك شيء ما. شكرًا لك على التفسير ، أجد أيضًا أنه أفضل بسهولة ...

  3. Mazuru

    القطعة المفيدة جدا

  4. Chayson

    في رأيي ، لقد تم خداعك كطفل.

  5. Leith

    لا أستطيع المشاركة الآن في المناقشة - لا يوجد وقت فراغ. لكنني سأطلق سراحي - سأكتب بالضرورة أعتقد.



اكتب رسالة