معلومة

في مقابل النضج خارج النبات: أيهما ينتج ثمارًا مغذية أكثر؟

في مقابل النضج خارج النبات: أيهما ينتج ثمارًا مغذية أكثر؟



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

قد تنضج العديد من الثمار إما عند لصقها بالنبات أو بمجرد فصلها عن النبات. ما هو الخيار الذي ينتج عنه فاكهة مغذية أكثر؟ بمعنى آخر ، إذا قطف المرء فاكهة وهي لا تزال غير ناضجة ، ثم انتظر حتى تنضج ، فهل سيكون للفاكهة خصائص غذائية متشابهة كما لو كان المرء ينتظرها حتى تنضج قبل قطفها؟


هل هناك فرق غذائي بين الفاكهة الناضجة على النبات والفاكهة التي تنضج على الرف في البقال؟

يتم قطف الكثير من الفاكهة من النبات في حالة & quotraw & quot ، مثل الموز والطماطم والأفوكادو & # x27s.

هل تحصل الفاكهة على الكثير من القيمة الغذائية إذا نضجت وهي لا تزال ملتصقة بالنبات؟

هل ستحتوي الفاكهة غير الناضجة التي تنضج على الرف في البقال المحلي على نفس القدر من العناصر الغذائية مثل تلك التي تنضج بينما لا تزال مرتبطة بها؟

بعض النباتات الحيوية الأساسية عند النضج:

بالنسبة لمعظم الثمار ، يتم التحكم في عملية النضج بواسطة هرمون النبات الإيثيلين. هذا هو الغاز الذي يتم إنتاجه في الفاكهة للحث على النضج ، ولكنه أيضًا إشارة قابلة للانتشار يمكن أن تعمل على مسافات. على سبيل المثال ، في بعض الأنواع ، إذا وضعت فاكهة ناضجة مع فاكهة غير ناضجة ، فإن الفاكهة الناضجة ستنتج الإيثيلين الذي يحفز الفاكهة القريبة على النضوج.

كان أول كائن تجاري معدّل وراثيًا هو طماطم flavr-savr ، وهي عبارة عن تركيبة RNA مضادة للحساسية تتداخل مع إنتاج الإيثيلين. من خلال منع الطماطم من صنع الإيثيلين الخاص بها ، يمكنك التحكم في عملية النضج عن طريق إضافة الإيثيلين عندما تريد ذلك. فشل flavr-savr لأنه تم تطويره في مجموعة متنوعة غير مناسبة للإنتاج التجاري. ومنذ ذلك الحين تم استيلاد انخفاض إنتاج الإيثيلين في معظم الأصناف التجارية.

تعتبر التغييرات الغذائية عند النضج معقدة للغاية وتعتمد على عدد من العوامل ، بما في ذلك الضوء ودرجة الحرارة. من المهم أن ندرك أن هذا يحدث في أنسجة الفاكهة الناضجة ، وأن نشاط اللحاء قليل جدًا في الثمار الناضجة التي يمكن أن تنضج من النبات. في حين أن الأنسجة الناضجة قد لا تنمو ، إلا أنها لا تزال تعمل كيميائيا.

لم أكن قادرًا على العثور على أي شيء يعالج بشكل مباشر مشكلة النضج في مقابل النضج خارج النبات ، ولكن أميل إلى أن هذا الاختلاف ضئيل مقارنة بالعوامل الأخرى. عمر الثمرة ، والظروف التي تم الاحتفاظ بها في (الضوء ، درجة الحرارة) ، والأهم من ذلك كله ظروف النمو وتنوع النبات ، ستلعب الدور الأكبر. إذا كنت أرغب في البحث عن الاختلافات الغذائية ، فسأركز بحثي على البحث عن أصناف مختلفة ، وليس نظام النضج.

باستخدام الطماطم ، تتراكم الفاكهة الناضجة على النبات تقريبًا كل السكريات والعديد من مركبات الفلافونويد في الأيام الثلاثة الماضية على الكرمة. لذلك عندما يسأل شخص ما إذا كانت التغذية موجودة ، أسأل عما إذا كانت النكهة موجودة لأنه عندما تكون النكهة موجودة ، فإن التغذية ستكون مثالية.

تحذير من أن إنتاج طماطم ذات نكهة جيدة أكثر بكثير من مجرد عملية النضج. هناك عنصر وراثي ضخم ، وحالة مغذيات التربة ، وضغط الآفات / المرض الذي يجب مراعاته. تم تطوير الطماطم التجارية لتكون كرة البولينج صلبة ، وحجم موحد ، وإنتاجية عالية ، ومجموعة من السمات الأخرى المرتبطة بشحنها 2000 ميل قبل وضعها في غرفة الإيثيلين لتنضج. أين كانت النكهة في أي من هذا؟

الخلفية ، أنا أنتج شتلات نباتية من أجل لقمة العيش وأنا ناقد طماطم للتسلية. http://www.selectedplants.com/culture.htm واقرأ العناصر القليلة الماضية.

تحرير: لا يعاني الموز من فقدان الكثير من النكهة والمغذيات من إنضاج النبات. من ناحية أخرى ، تفقد الطماطم عندما تنضج بقوة كمية كبيرة من الكاروتينات والفلافونويد والمواد المتطايرة التي تقلل بشكل كبير من محتوى المغذيات والنكهة. إذا كنت ترغب في قضاء فترة ما بعد الظهيرة في قراءة بعض الأبحاث الشيقة ، فابحث عن & quot؛ Klee tomato Flavor & quot. يحاول هاري على الأقل تربية طماطم أفضل ، على الرغم من أنني لست متأكدًا من قدرته على النجاح بالنظر إلى جينات كرة البولينج لمعظم الطماطم التجارية.

كانت الفقرة الأخيرة مفيدة للغاية. كان لدي انطباع بأن العديد من الفواكه التي لا تزال موجودة في الكرمة لا تزال تحتوي على الكثير من العناصر الغذائية والسكريات المنقولة إليها من خلال اللحاء وعندما يتم قطفها تفقد هذه السعة وبالتالي لا يكون مذاقها جيدًا.

أعلم أنه في حالة بعض الفاكهة ، وخاصة الأناناس ، لن يحدث أي نضج من النبات. لذلك ، مهما كانت الثمار حلوة أو ناضجة عند قطفها فهي الأفضل ستكون.

وفقًا للمقال ، تم تصميم flavr-savr بحيث لا ينتج polygalacturonase ، الذي يحلل البكتين في جدران الخلايا ويؤدي إلى تليين الطماطم.

عادة ما يتم حصاد الطماطم & # x27s قبل النضج ، لأنها ستكون طرية جدًا إذا سمح لها بالنضوج.

سيعتمد أيضًا على نوع النضج الدقيق. بعض النباتات تخزن النشا في الفاكهة غير الناضجة ، وتحول عملية النضج النشا إلى سكر ، والبعض الآخر يخزن السكر في مكان آخر ويوضع في الفاكهة. وهكذا يمكن تحلية النوع الأول من الفاكهة بعد قطفه والثاني لا يمكن تحليته. الأناناس ، على سبيل المثال ، لا تحصل على أي أحلى بعد قطفه لأنها & # x27re مقطوعة من السكر في الجذر.

لا ينطبق أي من هذا على جوانب النضج الأخرى مثل مركبات النكهة ، أو انهيار جدار الخلية ، أو نقص الحمض.

ليس مجال عملي ، ولكن لم يتقدم أحد بالعلم الفعلي ، لذلك يوجد مصدران استطعت أن أجدهما يشيران إلى حدوث اختلافات بين النضج على النبات مقابل ما بعد الحصاد ، أحدهما يظهر اختلافًا في تركيز مضادات الأكسدة والآخر يظهر اختلافًا في تركيز مضادات الأكسدة. اختلاف عام (أو نقص) بين النضج على الشجرة مقابل ما بعد الحصاد:

المصدر 1 (الرابط أدناه) & quot تشير البيانات إلى أن ظروف النضج أثرت على حركية تراكم مضادات الأكسدة والمحتوى النهائي ، والذي كان أعلى في الثمار الناضجة بعد الحصاد. & quot

المصدر 2 & quotI من الملاحظة الشائعة أن ثمار العديد من الأنواع تنضج بسرعة إذا تم حصادها ولكن بشكل أبطأ أو لا تنضج على الإطلاق إذا تركت على الشجرة. من الحالات المتطرفة لهذا السلوك حالة فويرتي أفوكادو (المزروعة في جنوب كاليفورنيا) والتي لن تنعم عندما تلتصق بالشجرة بواسطة جذع سليم. & quot

* أود أن أعتذر عن أي معلومات خاطئة قد تكون قد أعطيتها. كنت أرغب في سحب رسالتي حتى يكون لدي بعض الوقت لكتابة إجابة شاملة وموجزة تشرح مشاركاتي السابقة & # x27 الروابط والبيانات. أشجعك على قراءة بعض المنشورات الأخرى أدناه والتي تحتوي جميعها على معلومات ذات صلة ولكني لا أعتقد أن الإجابة الكاملة على السؤال هي. أميل إلى عدم شرح ما قدمته بشكل كامل. لذلك ، أشجع كل واحد منكم على التصويت على ردي حتى يتم شرحه بالتفصيل.

لقد تركت موردًا واحدًا يظهر ، في الواقع ، أن هناك فرقًا مهمًا من الناحية الإحصائية بين الطماطم الناضجة في النبات مقابل تلك الموجودة خارج الكرمة عند النظر في بعض المعايير المحددة. (يرجى ملاحظة مستوى حمض الأسكوربيك في الجدول 1).

بالإضافة إلى ذلك ، فقد تركت مصدرًا آخر يُظهر نتائج مماثلة توضح الاختلاف. (يرجى ملاحظة مستوى حمض الأسكوربيك) في الجدول 6. بالإضافة إلى الإشارة في الاستنتاجات إلى ضرورة إجراء المزيد من الأبحاث لمعرفة الفرق ، إن وجد ، الذي قد يكون موجودًا بالفعل.

ومع ذلك ، تظهر هاتان الدراستان نتائج مختلفة لأحد المتغيرات المختبرة نفسها (مستويات حمض الأسكوربيك). الأول ليس له أي تغيير كبير في حمض الأسكوربيك بينما الثاني لا يتغير. هناك اختلافات في الأسلوب بين الدراستين والتي قد تفسر ذلك. تشير الدراسة الأولى أيضًا إلى الاختلافات (كما ذكر البعض) بنسبة تصل إلى 30 ٪ مقارنةً بالكرمة الناضجة مقابل ليس فيما يتعلق بـ 4 من نقاط البحث الخاصة بهم.

في الجوهر الأساسي لهذا. نعم ، هناك فرق غذائي قابل للقياس بين الاثنين عند النظر إلى هذا العنصر الواحد ، وهو طماطم وتلك العناصر الغذائية المحددة التي تم اختبارها. السؤال الذي يكمن في صميم بياني الأصلي (لا ، لا يوجد الكثير). هو أن الاختلاف الغذائي سيكون صغيراً لدرجة أنه لن يحدث فرقاً في مخطط الرفاهية الغذائية للأفراد.

هذه مسألة تتعلق بكيفية تفسير المرء لأهمية عبارة & quotnutritional Difference & quot وما تشير إليه. لذلك ، أعتذر عن ذلك. ومع ذلك ، سأتناول تلك الشواغل المعروضة. أود أن أقول أنه نظرًا لاختلاف نتائج الطماطم ، فإن هذا لا يعني بالضرورة أن هذا ينطبق على جميع الفواكه.

لا أقوم بتدريس التغذية ولكني & # x27d أود التوسع في هذا الأمر. أوافق على أنني لم أسمع أي شيء يهم عملية النضج نفسها.

ما رأيته هو تقارير عن فقدان المغذيات بمرور الوقت منذ الحصاد. هذا تقرير يمكن أن أجده من خلال بحث سريع. كان الانطباع الذي حصلت عليه هو أن هذا بشكل عام لم تتم دراسته جيدًا وأن معظم علوم تخزين الطعام تدور حول سلامة الأغذية بدلاً من ذلك.

كيف ينطبق هذا على سؤالك هو إذا تم تقديم قطعتين من الفاكهة ذات النضج المكافئ إليك في محل البقالة ، ونضجت واحدة على النبات ونضجت الأخرى على الرف ، فيمكن للمرء أن يستنتج أن الواحدة قد نضجت في تم قطف النبات مؤخرًا وبالتالي كان لديه وقت أقل لتفسخ خصائص المغذيات.

لا يدعم أي من هذه المصادر الخمسة ادعاءاتك. أنا فقط قرأت الخمسة كلها. اثنان لا يعالجان المشكلة ، والثلاثة الآخرون (أحدهم يتعلق فقط بفاكهة ساموا يؤكلها الثعالب الطائرة) كلها تناقضك. أدعوك لنشر المصادر التي تدعم ادعاءاتك وإلا فقد ترغب في تعديل المنشور الخاص بك أو قد يتم حذفه لتعارضه مع مصادره الخاصة.

تفصيل اقتباساتك:

المرجع الأول - لا يتناول المحتوى الغذائي للفاكهة إطلاقاً إلا أنه يناقش المظهر والنكهة.

المرجع الثاني - يتعلق حقًا بالثعالب الطائرة ، ولكن حتى مع ذلك ، فإن البيانات التي قدمتها عن الثعالب غير الناضجة مقابل الفاكهة الناضجة التي تأكلها الثعالب الطائرة وجدت فرقًا: الفاكهة غير الناضجة تحتوي على كمية أقل من الحديد وكمية من الكالسيوم أكثر من الفاكهة الناضجة. لم يتم زراعة أي من الأنواع النباتية الخمسة التي تمت دراستها تجاريًا من قبل البشر ، وكلها أنواع من ساموا البرية تأكلها خفافيش الفاكهة.

المرجع الثالث - تتناول هذه الورقة موضوع الطماطم. تنص الخلاصة على: & quot ؛ احتوت الطماطم الناضجة على الكرمة على قدر أكبر من اللايكوبين وبيتا كاروتين والمواد الصلبة الذائبة والصلبة الكلية & quot (أي - 4 من المكونات الغذائية الخمسة التي تم فحصها). من خلال إلقاء نظرة على مائدتهم ، من الواضح أن الاختلافات بين اللايكوبين وبيتا كاروتين كبيرة جدًا ، حوالي 33 ٪ أعلى في الفاكهة الناضجة.

المرجع الرابع - هذا هو & # x27s حول فيتامين سي ويناقضك تمامًا. توضح المناقشة الطويلة التي تبدأ في الصفحة 211 أن توقيت الحصاد يؤثر بشكل كبير على تركيز فيتامين سي في مجموعة متنوعة من الفواكه والخضروات. على سبيل المثال: & quot النضج عند الحصاد وطريقة الحصاد وظروف المعالجة بعد الحصاد تؤثر أيضًا على محتوى فيتامين سي في الفاكهة والخضروات (قادر ، 1988). النضج هو أحد العوامل الرئيسية التي تحدد الجودة التركيبية للفواكه والخضروات. تم حصاد ثمار الطماطم الخضراء وتنضج عند 20 درجة مئوية حتى نضج المائدة وتحتوي على كمية أقل من AA [حمض الأسكوربيك ، فيتامين ج] من تلك التي تم حصادها في مرحلة نضج المائدة (قادر وآخرون ، 1977). Betancourt et al. (1977) ذكرت أيضًا أن فاكهة الطماطم التي تم تحليلها في مرحلة "التكسير" تحتوي على 69 ٪ فقط من تركيز AA المحتمل إذا نضجت على الكرمة حتى تنضج المائدة. تراكمت الثمار AA أثناء النضج داخل أو خارج النبات ، ولكن الزيادة كانت أكبر بكثير بالنسبة لتلك الفاكهة المتبقية على النبات.

المرجع الخامس - يتناول هذا المرجع فقط الطعام العضوي مقابل غير العضوي بقدر ما أستطيع أن أقول أنه لا يوجد شيء فيه حول الفاكهة الناضجة بالكروم مقابل الفاكهة الناضجة على الرف.


احصل على إشعارات عندما يكون لدينا أخبار أو دورات أو أحداث تهمك.

بإدخال بريدك الإلكتروني ، فإنك توافق على تلقي اتصالات من Penn State Extension. عرض سياسة الخصوصية.

شكرا لتقريركم!

شجرة التنوب الصربية - Picea omorika

مقالات

إنتاج الفاكهة لبستاني المنزل

أدلة ومنشورات

تنسيق الحدائق المنزلية

أدلة ومنشورات

2019 تجارب زهرة ولاية بنسلفانيا

أشرطة فيديو

دورات حياة النبات

مقالات

تغيير الجنس

ومن المثير للاهتمام ، أنه يمكن إعطاء ذكر الكاكي "تغيير جنسه" وجعله يؤتي ثماره. التطعيم هو التذكرة. خلال فصل الشتاء ، يتم قطع خشب "التطعيم" من أنثى معروفة ويتم تطعيمه في شتلة ذكر. بعد ذلك ، يتم قمع أي نمو من قاعدة الذكور ويسمح للكسب غير المشروع الأنثوي أن يصبح مهيمنًا. والنتيجة هي شجرة ذات جذور ذكورية وتاج أنثوي يحمل ثمار البرسيمون. في الواقع ليس من الصعب القيام بذلك. ستجد تعليمات لتطعيم الكاكي هنا.


الجذور المحصودة

اختر درنات مستديرة الشكل وخالية من الندوب والشقوق والكدمات والخدوش. ارفضي أي بقع داكنة أو ناعمة ، والتي تشير إلى احتمال وجود عدوى بكتيرية أو فطرية.

اترك الدرنة بين يديك لتقييم مدى ثقلها ، يجب أن تحتوي على كمية وفيرة من الماء للحصول على لحم نضر هش. قم بتمرير الدرنات مع وجود مؤشرات على انخفاض المياه الداخلية ، مثل تلك ذات المظهر المتجعد أو الناعم.

تحسس الجلد بأصابعك لترى مدى ثبات الثمرة ولتقييم مدى قسوة الجلد. رفض الفواكه التي لها قشرة ناعمة أو غير ناعمة وثابتة.

قشر الجيكاما بسكين حاد إذا تقشر بسهولة فهو ناضج وجاهز للأكل.


Adams DO ، Yang SF (1979) التخليق الحيوي للإيثيلين: تحديد حمض 1-aminocyclopropane-1-carboxylic كوسيط في تحويل الميثيونين إلى الإيثيلين. Proc Natl Acad Sci USA 76: 170–174

Adams-Phillips L، Barry C، Kannan P، Leclercq J، Bouzayen M، Giovannoni J (2004) الدليل على أن نقل إشارة الإيثيلين بوساطة CTR1 في الطماطم يتم ترميزه بواسطة عائلة متعددة الأجيال التي يظهر أعضاؤها سمات تنظيمية متميزة. مصنع مول بيول 54: 387-404

Adato A، Mandel T، Mintz-Oron S، Venger I، Levy D، Yativ M، Dominguez E، Wang Z، De Vos RCH، Jetter R، Schreiber L، Heredia A، Rogachev I، Aharoni A (2009) Fruit-Surface يتم التحكم في تراكم الفلافونويد في الطماطم بواسطة أ SlMYB12شبكة نسخ منظمة. بلوس جينيت 5: e1000777

Alba R و Payton P و Fei Z و McQuinn R و Debbie P و Martin GB و Tanksley SD و Giovannoni JJ (2005) تكشف تحليلات النسخ والأيض المختارة عن نقاط متعددة للتحكم في الإيثيلين أثناء تطوير فاكهة الطماطم. الخلية النباتية 17: 2954 - 2965

Atkinson RG ، Bolitho KM ، Wright MA ، Iturriagagoitia-Bueno T ، Reid SJ ، Ross GS (1998) Apple ACC-oxidase و polygalacturonase: التعبير الجيني المحدد للنضج وتحليل المروج في الطماطم المعدلة وراثيًا. مصنع مول بيول 38: 449-460

Atkinson RG ، Gunaseelan K ، Wang MY ، Luo L ، Wang T ، Norling CL ، Johnston SL ، Maddumage R ، Schröder R ، Schaffer RJ (2011) تشريح دور الإيثيلين في سن الكيوي (الأكتينيديا تشينينسيس) النضج باستخدام خط ضربة قاضية لحمض أوكسيديز 1-أمينوسيكلوبروبان -1-كربوكسيليك. J Exp Bot 62: 3821–3835

Ayub R، Guis M، Ben Amor M، Gillot L، Roustan JP، Latché A، Bouzayen M، Pech JC (1996) التعبير عن الجين المضاد للحساسية ACC أوكسيديز يمنع نضج ثمار الشمام. Nat Biotechnol 14: 862-866

Baldwin EA، Scott JW، Shewmaker CK، Schuch W (2000) نكهة التوافه ورائحة الطماطم: الكيمياء الحيوية والآليات الممكنة للتحكم في مكونات الرائحة الهامة. HortScience 35: 1013-1022

Ballester AR، Molthoff J، de Vos R، Hekkert BT، Orzaez D، Fernández-Moreno JP، Tripodi P، Grandillo S، Martin C، Heldens J، Ykema M، Granell A، Bovy A (2010) الطماطم: يؤدي التعبير غير المنظم عن عامل نسخ ترميز الجينات SlMYB12 إلى لون فاكهة الطماطم الوردي. النبات Physiol 152: 71-84

Bapat VA، Trivedi PK، Ghosh A، Sane VA، Ganapathi TR، Nath P (2010) إنضاج الفاكهة اللحمية: البصيرة الجزيئية ودور الإيثيلين. Biotechnol Adv 28: 94-107

Barry CS ، Giovannoni JJ (2006) النضج في الطماطم لون أخضر-ناضج متحولة عن طريق التعبير خارج الرحم للبروتين الذي يعطل إشارات الإيثيلين. Proc Natl Acad Sci USA 103: 7923–7928

Barry CS ، Blume B ، Bouzayen M ، Cooper W ، Hamilton AJ ، Grierson D (1996) التعبير التفاضلي لعائلة الجينات 1-aminocyclopropane-1-carboxylate oxidase من الطماطم. مصنع J 9: 525-535

Barry CS ، McQuinn RP ، Thompson AJ ، Seymour GB ، Grierson D ، Giovannoni JJ (2005) عدم حساسية الإيثيلين الممنوحة من قبل لون أخضر-ناضج و أبدا-ناضجة 2 تنضج طفرات الطماطم. النبات Physiol 138: 267–275

Barry C، McQuinn R، Chung M، Besuden A، Giovannoni J (2008) بدائل الأحماض الأمينية في متماثلات بروتين STAY-GREEN (SGR) مسؤولة عن طفرات اللحم الأخضر والكلوروفيل في الطماطم والفلفل. النبات Physiol 147: 179–187

Barry CS و Aldridge GM و Herzog G و Ma Q و McQuinn RP و Hirschberg J و Giovannoni JJ (2012). lutescent2 موضع الطماطم. النبات Physiol 159: 1086-1098

Belding RD، Blankenship SM، ​​Young E، Leidy RB (1998) تكوين وتنوع الشمع اللاصق في أصناف التفاح. J American Society for Hort Sci 123: 348–356

Bemer M ، Karlova R ، Ballester AR ، Tikunov YM ، Bovy AG ، Wolters-Arts M ، Rossetto Pde B ، Angenent GC ، de Maagd RA (2012) The tomato الفاكهة متماثلون TDR4 / FUL1 و MBP7 / FUL2 تنظيم الجوانب المستقلة عن الإيثيلين في نضج الثمار. الخلية النباتية 24: 4437-4451

Blackman FF، Parija P (1928) دراسات تحليلية في تنفس النبات. 1. تنفس السكان من التفاح الناضج الشيخوخة. Proc R Soc (Lond) B 103: 412–445

Borovsky Y، Paran I (2008) تضعف تحلل الكلوروفيل أثناء نضج ثمار الفلفل في طفرة الاحتفاظ بالكلوروفيل عند تجانس الجين الأخضر المحفز للشيخوخة. Theor Appl Genet 117: 235-240

Broun P (2005) التحكم النسخي للتخليق الحيوي للفلافونويد: شبكة معقدة من المنظمين المحفوظين المشاركين في جوانب متعددة من التمايز في أرابيدوبسيس. مصنع Curr Op Biol 8: 272-279

Brummell DA (2006) تفكيك جدار الخلية في الفاكهة الناضجة. Funct Plant Bio 33: 103-119

Brummell DA ، Harpster MH (2001) استقلاب جدار الخلية في تليين الفاكهة وجودتها والتلاعب بها في النباتات المعدلة وراثيًا. مصنع مول بيول 47: 311-340

Brummell DA و Harpster MH و Civello PM و Palys JM و Bennett AB و Dunsmuir P ​​(1999) يؤدي تعديل وفرة بروتين الامتداد في فاكهة الطماطم إلى تليين واستقلاب بوليمر جدار الخلية أثناء النضج. الخلية النباتية 11: 2203 - 2216

Buchanan-Wollaston V (2007) شيخوخة النباتات. eLS. دوى: 10.1002 / 9780470015902.a0020133

Butelli E، Titta L، Giorgio M، Mock HP، Matros A، Peterek S، Schijlen EG، Hall RD، Bovy AG، Luo J، Martin C (2008) إثراء فاكهة الطماطم بأنثوسيانين المعزز للصحة من خلال التعبير عن عوامل النسخ المختارة . Nat Biotechnol 26: 1301-1308

Buttery RG (1993) الجوانب الكمية والحسية لنكهة الطماطم والخضروات والفواكه الأخرى. في: Acree TE، Teranishshi R (محرران) علم النكهة: مبادئ وتقنيات معقولة. الجمعية الكيميائية الأمريكية ، واشنطن العاصمة ، ص 259 - 286

Buttery RG، Ling LC (1993) المكونات المتطايرة لفاكهة الطماطم وأجزاء النبات: العلاقة والتكوين الحيوي. ACS Symp Ser 525: 23–34

Carpita NC، Gibeaut DM (1993) النماذج الهيكلية لجدران الخلايا الأولية في النباتات المزهرة: اتساق التركيب الجزيئي مع الخصائص الفيزيائية للجدران أثناء النمو. مصنع J 3: 1-30

Cevik V ، Ryder CD ، Popovich A ، Manning K ، King GJ ، Seymour GB (2010) يرتبط الجين الشبيه بالفواكه بالتنوع الجيني لثبات لب الفاكهة في التفاح (Malus domestica بورخ). جينومات الشجرة 6: 271-279

Chen YF ، Randlett MD ، Findell JL ، Schaller GE (2002) توطين مستقبل الإيثيلين ETR1 إلى الشبكة الإندوبلازمية لـ أرابيدوبسيس. جيه بيول كيم 277: 19861–19866

Chen G ، Hackett R ، Walker D ، Talor A ، Lin Z ، Grierson D (2004) تحديد شكل إسوي معين من ليبوكسجيناز الطماطم (TomloxC) المتضمن في توليد مركبات النكهة المشتقة من الأحماض الدهنية. النبات Physiol 136: 2641–2651

Che-Radziah CMZ، Nurul-Shahnadz AH، Nairatul-Ain AN، Zainal Z (2011) التحول الجيني لأكسيداز ACC المضاد للحساسية في كاريكا بابايا L. cv Sekaki عن طريق قصف الجسيمات. ماليزي أبل بيول 40: 39-45

Chung M ، Vrebalov J ، Alba R ، Lee J ، McQuinn R ، Chung JD ، Klein P ، Giovannoni J (2010) A tomato (Solanum lycopersicum) APETALA2 / ERF الجين SlAP2a، هو منظم سلبي لنضج الثمار. مصنع J 64: 936-947

Cin V، Tieman DM، Tohge T، McQuinn R، de Vos RC، Osorio S، Schmelz EA، Taylor MG، Smits-Kroon MT، Schuurink RC، Haring MA، Giovannoni J، Fernie AR، Klee HJ (2010) Identific-ation من الجينات في المسار الأيضي للفينيل ألانين عن طريق التعبير خارج الرحم لعامل النسخ MYB في فاكهة الطماطم. الخلية النباتية 23: 2738-2753

Cunningham FX Jr، Pogson B، Sun Z، McDonald KA، DellaPenna D، Gantt E (1996) التحليل الوظيفي لإنزيمات b و e lycopene cyclase of أرابيدوبسيس يكشف عن آلية للتحكم في تكوين الكاروتين الدوري. الخلية النباتية 8: 1613-1626

Davidovich-Rikanati R، Sitrit Y، Tadmor Y، Iijima Y، Bilenko N، Bar E، Carmona B، Fallik E، Dudai N، Simon JE، Pichersky E، Lewinsohn E (2007) إثراء نكهة الطماطم عن طريق تحويل البلاستيديال المبكر مسار تيربينويد. Nat Biotech 25: 899-901

DeFillipi BG ، Manriquez D ، Luengwilai K ، Gonzalez-Aguero M (2009) Aroma volatiles: التخليق الحيوي وآليات التعديل أثناء نضج الفاكهة. أدف بوت ريس 50: 1–37

Dong H، Deng Y، Mu J، Lu Q، Wang Y، Xu Y، Chu C، Chong K، Lu C، Zuo J (2007) The أرابيدوبسيس موت الخلايا العفوي 1 الجين ، الذي يشفر مادة z-carotene desaturase الضرورية للتخليق الحيوي للكاروتينويد ، يشارك في تطوير البلاستيدات الخضراء ، والحماية الضوئية ، والإشارات إلى الوراء. Nat Cell Res 17: 458-470

Egea I، Barsan C، Bian W، Purgatto E، Latche A، Chervin C، Bouzayen M، Pech J-C (2010) تمايز Chromoplast: الوضع الحالي ووجهات النظر. فيسيول الخلية النباتية 51: 1601–1611

Elitzur T، Vrebalov J، Giovannoni JJ، Goldschmidt EE، Friedman H (2010) تنظيم التعبير الجيني لمربع MADS أثناء نضج الموز وتفاعلهم التنظيمي مع الإيثيلين. J Exp Bot 61: 1523-1535

Espley RV، Hellens RP، Putterill J، Stevenson DE، Kutty-Amma S، Allan AC (2007) يرجع اللون الأحمر في فاكهة التفاح إلى نشاط عامل النسخ MYB ، MdMYB10. مصنع J 49: 414-427

Espley RV و Brendolise C و Chagne D و Kutty-Amma S و Green S و Volz R و Putterill J و Schouten HJ و Gardiner SE و Hellens RP و Allan AC (2009) تؤدي التكرارات المتعددة لقطاع المروج إلى تنظيم عامل النسخ التلقائي في التفاح الأحمر . الخلية النباتية 21: 168–183

Fray RG، Grierson D (1993) التعرف والتحليل الجيني لجينات phytoene synthase الطبيعية والمتحولة من الطماطم عن طريق التسلسل والتكامل والقمع المشترك. مصنع مول بيول 22: 589-602

Fujisawa M ، Nakano T ، Ito Y (2011) تحديد الجينات المستهدفة المحتملة لمنظم نضج ثمار الطماطم RIN عن طريق الترسيب المناعي للكروماتين. مصنع بيول BMC 11:26

Gagne JM ، Smalle J ، Gingerich DJ ، Walker JM ، Yoo SD ، Yanagisawa S ، Vierstra RD (2004) أرابيدوبسيس يشكل F-box 1 و 2 المرتبط بـ EIN3 ليغازات بروتين يوبيكويتين التي تثبط عمل الإيثيلين وتعزز النمو من خلال توجيه تدهور EIN3. Proc Natl Acad Sci USA 101: 6803–6808

Galpaz N ، Ronen G ، Khalfa Z ، Zamir D ، Hirschberg J (2006) تم الكشف عن مسار التخليق الحيوي للكاروتينويد الخاص بالبلاستيك الكروموبلاست عن طريق استنساخ الطماطم أبيض-زهرة المكان. الخلية النباتية 18: 1947-1960

Gan S ، Amasino RM (1995) تثبيط شيخوخة الأوراق عن طريق الإنتاج المنظم للسيتوكينين. Science 270: 1986-1988

Garcia-Limones C ، Schnabele K ، Blanco-Portales R ، Bellido ML ، Caballero JL ، Schwab W ، Munoz-Blanco J (2008) FaCCD1: ديوكسجيناز انقسام كاروتينويد من الفراولة يشارك في تحلل اللوتين أثناء نضج الثمار. J أغريك فود تشيم 56: 9277-9285

Giovannoni JJ (2007) تقدم طفرات نضج الفاكهة نظرة ثاقبة للتحكم في النضج. نبات العملة بالعملة بيول 10: 283 - 289

Giovannoni JJ ، DellaPenna D ، Bennett AB ، Fischer RL (1989) التعبير عن جين خيمري polygalacturonase في الجينات المعدلة وراثيًا رين (مثبط النضج) تؤدي ثمار الطماطم إلى تحلل البوليورونيد ولكن لا تؤدي إلى تليين الفاكهة. الخلية النباتية 1: 53-63

جيرارد أل ، مونيه إف ، لومير شاملي إم ، جيلارد سي ، المورجاني ك ، فيفانكوس جي ، رونافوت جي إل ، كومينر بي ، بيتي جي ، جيرمان الخامس ، روتان سي ، ماريون دي ، باكان بي (2012) طماطم GDSL1 مطلوب لترسيب الكوتين في بشرة الفاكهة. الخلية النباتية 24: 3106-3121

Goulao LF، Oliveira CM (2007) تعديلات جدار الخلية أثناء نضج الثمار: عندما لا تكون الثمرة هي الفاكهة. Trends Food Sci Technol 19: 4-25

Goulet C ، Mageroy MH ، Lam N ، Floystad A ، Tieman DM ، Klee HJ (2012) دور الإستريز في تباين النكهة المتقلبة داخل كليد الطماطم. Proc Natl Acad Sci USA 109: 19009–19014

Guo H ، Ecker JR (2003) يتم التوسط في استجابات النبات لغاز الإيثيلين بواسطة SCF (EBF1 / EBF2) - التحلل البروتيني المعتمد لعامل النسخ EIN3. الخلية 115: 667-677

Guo Y، Gan S (2006) يلعب AtNAP ، وهو عامل نسخ عائلة NAC ، دورًا مهمًا في شيخوخة الأوراق. مصنع J 46: 601-612

Hamilton AJ، Lycett GW، Grierson D (1990) الجين المضاد للحساسية الذي يثبط تخليق هرمون الإيثيلين في النباتات المعدلة وراثيًا. Nature 346: 284-287

Hancock RD ، Viola R (2005) التخليق الحيوي وتقويض حمض الأسكوربيك في النباتات. Crit Rev Plant Sci 24: 167–188

Hileman L، Sundstrom J، Litt A، Chen M، Shumba T، Irish V (2006) التحليلات الجزيئية والتطورية لعائلة جينات صندوق MADS في الطماطم. مول بيول إيفول 23: 2245-2258

Hirschberg J (2001) التخليق الحيوي للكاروتين في النباتات المزهرة. نبات العملة بالعملة بيول 4: 210-218

Hovav R ، Chehanovsky N ، Moy M ، Jetter R ، Schaffer AA (2007) تحديد الجين (Cwp1) ، الذي تم إسكاته أثناء تطور Solanum ، والذي يسبب التجفيف الدقيق للبشرة والجفاف عند التعبير عنها في ثمار الطماطم. مصنع J 52: 627-639

Ioannidi E ، Kalamaki MS ، Engineer C ، Pateraki I ، Alexandrou D ، Mellidou I ، Giovannoni JJ ، Kanellis AK (2009) تحديد ملامح التعبير عن الجينات المرتبطة بحمض الأسكوربيك أثناء تطوير ثمار الطماطم ونضجها واستجابة لظروف الإجهاد. J Exp Bot 60: 663-678

Isaacson T ، Ronen G ، Zamir D ، Hirschberg J (2002) استنساخ يوسفي من الطماطم يكشف عن إيزوميراز كاروتينويد ضروري لإنتاج ب-كاروتين وزانثوفيل في النباتات. الخلية النباتية 14: 333–342

Isaacson T و Kosma DK و Matas AJ و Buda GJ و He Y و Yu B و Pravitasari A و Batteas JD و Stark RE و Jenks MA و Rose JKC (2009) يؤثر نقص الكوتين في بشرة فاكهة الطماطم باستمرار على مقاومة العدوى الميكروبية والميكانيكية الحيوية الخصائص ، ولكن ليس فقدان المياه النتح. مصنع J 60: 363 - 377

Itai A ، Ishihara K ، Bewley JD (2003) توصيف التعبير ، والاستنساخ ، من beta-D-xylosidase و alpha-L-arabinofuranosidase في تطوير ونضج الطماطم (Lycopersicon esculentum مطحنة) الفاكهة. J Exp Bot 54: 2615-2622

Itkin M، Seybold H، Breitel D، Rogachev I، Meir S، Aharoni A (2009) The طماطم عجموس-مثل 1 هو أحد مكونات الشبكة التنظيمية لنضج الفاكهة. مصنع J 60: 1081-1095

إيتو واي ، كيتاجاوا إم ، إيهشي إن ، يابي ك ، كيمبارا ج ، ياسودا ج ، إيتو إتش ، إيناكوما تي ، هيروي إس ، كاسومي تي (2008) خصوصية ربط الحمض النووي ، وإمكانات التنشيط النسخي ، و رين تأثير الطفرة لمنظم نضج ثمار الطماطم RIN. مصنع J 55: 212-223

Jaakola L، Poole M، Jones MO، Kämäräinen-Karppinen T، Koskimäki JJ، Hohtola A، Häggman H، Fraser PD، Manning K، King GJ، Thomson H، Seymour GB (2010) A مربع SQUAMOSA MADS الجين المسؤول عن تنظيم تراكم الأنثوسيانين في ثمار التوت. النبات Physiol 153: 1619–1629

Kamiyoshihara Y ، Tieman DM ، Huber DJ ، Klee HJ (2012) التغيرات التي يسببها Ligand في حالة الفسفرة لمستقبلات الإيثيلين في فاكهة الطماطم. النبات Physiol 160: 488-497

Karlova R ، Rosin FM ، Busscher-Lange J ، Parapunova V ، Do PT ، Fernie AR ، Fraser PD ، Baxter C ، Angenent GC ، de Maagd RA (2011) يظهر التنميط النسخي والمستقلب أن APETALA2a هو منظم رئيسي لنضج ثمار الطماطم. الخلية النباتية 23: 923-941

Kerstiens G (1996) نفاذية الماء الجلدي وأهميته الفسيولوجية. J Exp Bot 47: 1813-1832

Kevany B، Tieman DM، Taylor M، Dal Cin V، Klee H (2007) يتحكم تدهور مستقبل الإيثيلين في توقيت نضج ثمار الطماطم. مصنع J 51: 458-567

Kevany BM ، Taylor MG ، Klee HJ (2008) قمع خاص بالفاكهة لمستقبلات الإيثيلين LeETR4 يؤدي إلى نضج ثمار الطماطم في وقت مبكر. التكنولوجيا الحيوية النباتية J 6: 295 - 300

Klee HJ (2004) نقل إشارة الإيثيلين. تجاوز أرابيدوبسيس. النبات Physiol 135: 660-667

Klee HJ (2010) تحسين نكهة الفواكه الطازجة: علم الجينوم ، والكيمياء الحيوية ، والتكنولوجيا الحيوية. نيو فيتول 187: 44-56

Klee HJ، Giovannoni JJ (2011) الوراثة والتحكم في نضج ثمار الطماطم وسمات الجودة. Annu Rev Genet 45: 41-59

Klee HJ ، Hayford MB ، Kretzmer KA ، Barry GF ، Kishore GM (1991) التحكم في تخليق الإيثيلين عن طريق التعبير عن إنزيم بكتيري في نباتات الطماطم المعدلة وراثيًا. الخلية النباتية 3: 1187-1194

Kosma DK ، Parsons EP ، Isaacson T ، Lu S ، Rose JKC ، Jenks MA (2010) تركيبات دهون بشرة الفاكهة أثناء التطور في طفرات نضج الطماطم. نبتة فيزيول 139: 107-117

Kou X ، Watkins CB ، Gan SS (2012) أرابيدوبسيس AtNAP ينظم شيخوخة الفاكهة. J Exp Bot 63: 6139-6147

Kovacs K ، Fray RG ، Tikunov Y ، Graham N ، Bradley G ، Seymour GB ، Bovy AG ، Grierson D (2009) تأثير طفرات النضج متعددة الاتجاهات على تخليق النكهة المتطايرة. كيمياء النبات 70: 1003 - 1008

كومار آر ، شارما إم كي ، كابور إس ، تياجي إيه كيه ، شارما إيه كيه (2012) تحليل ترانسكريبتوم لـ رين تقدم الفاكهة الطافرة والتحليل السيليكو لمحفزات الجينات المنظمة تفاضليًا نظرة ثاقبة لمادز-رين- الجوانب المعتمدة على الإيثيلين المعتمد على الإيثيلين وكذلك المستقلة عن الإيثيلين للنضج في الطماطم. المولي جينوميات 287: 189-203

Laguna L ، Casado CG ، Heredia A (1998) التخليق الحيوي للفلافونويد في بشرة فاكهة الطماطم بعد التضمين في الجسم الحي لسلائف H-phenylalanine. مصنع فيزيول 105: 491-498

Leclercq J ، Adams-Phillips L ، Zegzouti H ، Jones B ، Latche A et al (2002) LECTR1، طماطم نسبة النقر إلى الظهور 1-مثل الجين ، يوضح قدرة إشارات الإيثيلين في أرابيدوبسيس وأنماط تعبير جديدة في الطماطم. النبات Physiol 130: 1132-1142

Lee JM ، و Joung JG ، و McQuinn R ، و Chung MY ، و Fei Z ، و Tieman D ، و Klee H ، و Giovannoni J (2012). SlERF6 يلعب دورًا مهمًا في النضج وتراكم الكاروتين. مصنع J 70: 191-204

Lewinsohn E، Sitrit Y، Bar E، Azulay Y، Meir A، Zamir D، Tadmor Y (2005a) يؤثر تصبغ الكاروتين على التركيب المتطاير لثمار الطماطم والبطيخ ، كما يتضح من التحليل الجيني المقارن. J أغريك فود تشيم 53: 3142-3148

Lewinsohn E، Sitrit Y، Bar E، Azulay Y، Ibdah M، Meir A، Yosef E، Zamir D، Tadmor Y (2005b) ليس فقط الألوان - تدهور الكاروتين كحلقة وصل بين التصبغ والرائحة في الطماطم وفاكهة البطيخ. Trends Food Sci Technol 16: 407-415

لي إف ، موريللو سي ، وورتزل إي تي (2007) ذرة Y9 يشفر منتجًا ضروريًا لأزمرة 15-cis-z-carotene. النبات Physiol 144: 1181-1189

Lin Z و Arciga-Reyes L و Zhong S و Alexander L و Hackett R و Wilson I و Grierson D (2008a) SlTPR1 ، وهو بروتين مكرر رباعي الببتيد للطماطم ، يتفاعل مع مستقبلات الإيثيلين NR و LeETR1 ، مما يؤدي إلى تعديل استجابات الإيثيلين والأوكسين وتطويرها. J Exp Bot 59: 4271-4287

Lin Z ، Hong Y ، Yin M ، Li C ، Zhang K ، Grierson D (2008b) يلعب بروتين homobox للطماطم HD-zip LeHB-1 دورًا مهمًا في تكوين الأعضاء الزهرية والنضج. مصنع J 55: 301-310

Lin Z ، Zhong S ، Grierson D (2009) التطورات الحديثة في أبحاث الإيثيلين. J Exp Bot 60: 3311–3336

Luque P, Bruque S, Heredia A (1995) Water permeability of isolated cuticular membranes: a structural analysis. Arch Biochem Biophys 317:417–422

Manning K, Tor M, Poole M, Hong Y, Thompson AJ, King GJ, Giovannoni JJ, Seymour GB (2006) A naturally occurring epigenetic mutation in a gene encoding an SPB-box transcription factor inhibits tomato fruit ripening. Nat Genet 38:949–952

Marín-Rodríguez MC, Orchard J, Seymour GB (2002) Pectate lyases, cell wall degradation and fruit softening. J Exp Bot 53:2115–2119

Martel C, Vrebalov J, Tafelmeyer P, Giovannoni JJ (2011) The tomato MADS-box transcription factor RIPENING INHIBITOR interacts with promoters involved in numerous ripening processes in a COLORLESS NONRIPENING- بطريقة مستقلة. Plant Physiol 157:1568–1579

Matas AJ, Gapper NE, Chung MY, Giovannoni JJ, Rose JK (2009) Biology and genetic engineering of fruit maturation for enhanced quality and shelf-life. Curr Opin Biotechnol 20:197–203

Matas AJ, Yeats TH, Buda GJ, Zheng Y, Chatterjee S, Tohge T, Ponnala L, Adato A, Aharoni A, Stark R, Fernie AR, Fei Z, Giovannoni JJ, Rose JK (2011) Tissue- and cell-type specific transcriptome profiling of expanding tomato fruit provides insights into metabolic and regulatory specialization and cuticle formation. Plant Cell 23:3893–3910

Mathieu S, Dal Cin V, Fei Z, Li H, Bliss P, Taylor M, Klee H, Tieman D (2009) Flavor compounds in tomato fruits: identification of loci and potential pathways affecting volatile composition. J Exp Bot 60:325–337

Matthews PD, Luo RB, Wurtzel ET (2003) Maize phytoene desaturase and z-carotene desaturase catalyze a poly-Z desaturation pathway: implications for genetic engineering of carotenoid content among cereal crops. J Exp Bot 54:2215–2230

McMurchie EJ, McGlasson WB, Eaks IL (1972) Treatment of fruit with propylene gives information about the biogenesis of ethylene. Nature 237:235–236

Miao Y, Zentgraf U (2007) The antagonist function of أرابيدوبسيس WRKY53 و ESR/ESP in leaf senescence is modulated by the jasmonic and salicylic acid equilibrium. Plant Cell 19:819–830

Mintz-Oron S, Mandel T, Rogachev I, Feldberg L, Lotan O, Yativ M, Wang Z, Jetter R, Venger I, Adato A, Aharoni A (2008) Gene expression and metabolism in tomato fruit surface tissues. Plant Physiol 147:823–851

Mohorianu I, Schwach F, Jing R, Lopez-Gomollon S, Moxon S, Szittya G, Sorefan K, Moulton V, Dalmay T (2011) Profiling of short RNAs during fleshy fruit development reveals stage-specific sRNAome expression patterns. Plant J 67:232–246

Moxon S, Jing R, Szittya G, Schwach F, Rusholme Pilcher RL, Moulton V, Dalmay T (2008) Deep sequencing of tomato short RNAs identifies microRNAs targeting genes involved in fruit ripening. Genome Res 18:1602–1609

Muir SR, Collins GJ, Robinson S, Hughes S, Bovy A, De Vos RCH, van Tunen AJ, Verhoeyen ME (2001) Overexpression of petunia chalcone isomerase in tomato results in fruit containing increased levels of flavonols. Nat Biotechnol 19:470–474

Nakatsuka A, Murachi S, Okunishi H, Shiomi S, Nakano R, Kubo Y, Inaba A (1998) Differential expression and internal feedback regulation of 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase, 1-aminocyclopropane-1-carboxylate oxidase, and ethylene receptor genes in tomato fruit during development and ripening. Plant Physiol 118:1295–1305

Nashilevitz S, Melamed-Bessudo C, Izkovich Y, Rogachev I, Osorio S, Itkin M, Adato A, Pankratov I, Hirschberg J, Fernie AR, Wolf S, Usadel B, Levy AA, Rumeau D, Aharoni A (2010) An orange ripening mutant links plastid NAD(P)H dehydrogenase complex activity to central and specialized metabolism during tomato fruit maturation. Plant Cell 22:1977–1997

Oeller PW, Wong LM, Taylor LP, Pike DA, Theologis A (1991) Reversible inhibition of tomato fruit senescence by antisense RNA. Science 254:437–439

O’Malley RC, Rodriguez FI, Esch JJ, Binder BM, O’Donnell P, Klee HJ, Bleecker AB (2005) Ethylene-binding activity, gene expression levels, and receptor system output for ethylene receptor family members from أرابيدوبسيس and tomato. Plant J 41:651–659

Osorio S, Alba R, Damasceno CM, Lopez-Casado G, Lohse M, Zanor MI, Tohge T, Usadel B, Rose JK, Fei Z, Giovannoni JJ, Fernie AR (2011) Systems biology of tomato fruit development: combined transcript, protein, and metabolite analysis of tomato transcription factor (ولا, rin) and ethylene receptor (Nr) mutants reveals novel regulatory interactions. Plant Physiol 157:405–425

Pan IL, McQuinn R, Giovannoni JJ, Irish VF (2010) Functional diversification of AGAMOUS lineage genes in regulating tomato flower and fruit development. J Exp Bot 61:1795–1806

Pan Y, Bradley G, Pyke K, Ball G, Lu C, Fray R, Marshall A, Jayasuta S, Baxter C, van Wijk R, Boyden L, Cade R, Chapman NH, Fraser PD, Hodgman C, Seymour GB (2013) Network inference analysis identifies an APRR2-like gene linked to pigment accumulation in tomato and pepper fruits. Plant Physiol 161:1476–1485

Peschel S, Franke R, Schreiber L, Knoche M (2007) Composition of the cuticle of developing sweet cherry fruit. Phytochemistry 68:1017–1025

Picton S, Barton SL, Bouzayen M, Hamilton AJ, Grierson D (1993) Altered fruit ripening and leaf senescence in tomatoes expressing an antisense ethylene-forming enzyme transgene. Plant J 3:469–481

Pirrello J, Jaimes-Miranda F, Sanchez-Ballesta MT, Tournier B, Khalil-Ahmad Q, Regad F, Latche A, Pech JC, Bouzayen M (2006) Sl-ERF2, a tomato ethylene response factor involved in ethylene response and seed germination. Plant Cell Physiol 47:1195–1205

Pnueli L, Hareven D, Rounsley SD, Yanofsky MF, Lifschitz E (1994) Isolation of the tomato AGAMOUS الجين TAG1 and analysis of its homeotic role in transgenic plants. Plant Cell 6:163–173

Potuschak T, Lechner E, Parmentier Y, Yanagisawa S, Grava S, Koncz C, Genschik P (2003) EIN3-dependent regulation of plant ethylene hormone signaling by two أرابيدوبسيس F box proteins: EBF1 and EBF2. Cell 115:679–689

Powell AL, Nguyen CV, Hill T, Cheng KL, Figueroa-Balderas R, Aktas H, Ashrafi H, Pons C, Fernández-Muñoz R, Vicente A, Lopez-Baltazar J, Barry CS, Liu Y, Chetelat R, Granell A, Van Deynze A, Giovannoni JJ, Bennett AB (2012) Uniform ripening encodes a Golden 2-like transcription factor regulating tomato fruit chloroplast development. Science 336:1711–1715

Prasanna V, Prabha TN, Tharanathan RN (2007) Fruit ripening phenomena-an overview. Critical Rev Food Sci Nut 47:1–19

Qiao H, Chang KN, Yazaki J, Ecker JR (2009) Interplay between ethylene, ETP1/ETP2 F-box proteins, and degradation of EIN2 triggers ethylene responses in أرابيدوبسيس. Genes Dev 23:512–521

Qin G, Gu H, Ma L, Peng Y, Deng XW, Chen Z, Qu L-J (2007) Disruption of phytoene desaturase gene results in albino and dwarf phenotypes in أرابيدوبسيس by impairing chlorophyll, carotenoid, and gibberellin biosynthesis. Nature Cell Res 17:471–482

Qin G, Wang Y, Cao B, Wang W, Tian S (2012) Unraveling the regulatory network of the MADS box transcription factor RIN in fruit ripening. Plant J 70:243–255

Reina-Pinto JJ, Yephremov A (2009) Surface lipids and plant defenses. Plant Physiol Biochem 47:540–549

Resnick JS, Wen C-K, Shockey JA, Chang C (2006) REVERSION-TO-ETHYLENE SENSITIVITY1, a conserved gene that regulates ethylene receptor function in أرابيدوبسيس. Proc Natl Acad Sci USA 103:7917–7922

Rodriguez F, Esch J, Hall A, Binder B, Schaller GE, Bleecker AB (1999) A copper cofactor for the ETR1 receptor from أرابيدوبسيس. Science 283:996–998

Rodriguez-Concepcion M, Boronat A (2002) Elucidation of the methylerythritol phosphate pathway for isoprenoid biosynthesis in bacteria and plastids. A metabolic milestone achieved through genomics. Plant Physiol 130:1079–1089

Rodríguez-Gacio MC, Iglesias-Fernández R, Carbonero P, Matilla AJ (2012) Softening-up mannan-rich cell walls. J Exp Bot 63:3976–3988

Rohdich F, Zepeck F, Adam P, Hecht S, Kaiser J, Laupitz R, Grawert T, Amslinger S, Eisenreich W, Bacher A, Arigoni D (2003) The deoxyxylulose phosphate pathway of isoprenoid biosynthesis: studies on the mechanisms of the reactions catalyzed by IspG and IspH protein. Proc Natl Acad Sci USA 100:1586–1591

Rose JK, Lee HH, Bennett AB (1997) Expression of a divergent expansin gene is fruit-specific and ripening-regulated. Proc Natl Acad Sci USA 94:5955–5960

Rottmann WH, Peter GF, Oeller PW, Keller JA, Shen NF, Nagy BP, Taylor LP, Campbell AD, Theologis A (1991) 1-aminocyclopropane-1-carboxylate synthase in tomato is encoded by a multigene family whose transcription is induced during fruit and floral senescence. J Mol Biol 222:937–961

Sacher JA (1973) Senescence and post harvest physiology. Annu Rev Plant Physiol 24:197–310

Saladié M, Rose JK, Cosgrove DJ, Catalá C (2006) Characterization of a new xyloglucan endotransglucosylase/hydrolase (XTH) from ripening tomato fruit and implications for the diverse modes of enzymic action. Plant J. 47:282–295

Saladié M, Matas AJ, Isaacson T, Jenks MA, Goodwin SM, Niklas KJ, Xiaolin R, Labavitch JM, Shackel KA, Fernie AR, Lytovchenko A, O'Neill MA, Watkins CB, Rose JK (2007) A reevaluation of the key factors that influence tomato fruit softening and integrity. Plant Physiol 144:1012–1028

Schaffer RJ, Friel EN, Souleyre EJF, Bolitho K, Ledger KTS, Bowen JH, Ma J-H, Nain B, Cohen D, Gleave AP, Crowhurst RN, Janssen BJ, Yao J-L, Newcomb RD (2007) A genomics approach reveals that aroma production in apple is controlled by ethylene predominantly at the final step in each biosynthetic pathway. Plant Physiol 144:1899–1912

Seymour GB, Manning K, Eriksson EM, Popovich AH, King GJ (2002) Genetic identification and genomic organization of factors affecting fruit texture. J Exp Bot 53:2065–2071

Seymour GB, Ryder CD, Cevik V, Hammond JP, Popovich A, King GJ, Vrebalov J, Giovannoni JJ, Manning K (2011) A SEPALLATA gene is involved in the development and ripening of strawberry (فراجاريا × ananassa Duch.) fruit, a non-climacteric tissue. J Exp Bot 62:1179–1188

Seymour GB, Østergaard L, Chapman NH, Sandra Knapp S, Martin C (2013) Fruit development and ripening. Annu Rev Plant Biol 64:1–11

Shi JX, Adato A, Alkan N, He Y, Lashbrooke J, Matas AJ, Meir S, Malitsky S, Isaacson T, Prusky D, Leshkowitz D, Schreiber L, Granell AR, Widemann E, Grausem B, Pinot F, Rose JK, Rogachev I, Rothan C, Aharoni A (2013) The tomato SlSHINE3 transcription factor regulates fruit cuticle formation and epidermal patterning. New Phytol 197:468–480

Shivaprasad PV, Chen HM, Patel K, Bond DM, Santos BA, Baulcombe DC (2012) A microRNA superfamily regulates nucleotide binding site-leucine-rich repeats and other mRNAs. Plant Cell 24:859–874

Smirnoff N, Conklin PL, Loewus FA (2001) Biosynthesis of ascorbic acid in plants: a renaissance. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol 52:437–467

Smith CJ, Watson CF, Bird CR, Ray J, Schuch W, Grierson D (1990) Expression of a truncated tomato polygalacturonase gene inhibits expression of the endogenous gene in transgenic plants. Mol Gen Genet 224:477–481

Smith DL, Abbott JA, Gross KC (2002) Down-regulation of tomato beta-galactosidase 4 results in decreased fruit softening. Plant Physiol 129:1755–1762

Sozzi GO, Greve LC, Prody GA, Labavitch JM (2002) Gibberellic acid, synthetic auxins, and ethylene differentially modulate alpha-L-arabinofuranosidase activities in antisense 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase tomato pericarp discs. Plant Physiol 129:1330–1340

Speirs J, Lee E, Holt K, Yong-Duk K, Scott NS, Schuch W, Loveys B (1998) Genetic manipulation of alcohol dehydrogenase levels in ripening tomato fruit affects the balance of some flavor aldehydes and alcohols. Plant Physiol 117:1047–1058

Tacken E, Ireland H, Gunaseelan K, Karunairetnam S, Wang D, Schultz K, Bowen J, Atkinson RG, Johnston JW, Putterill J, Hellens RP, Schaffer RJ (2010) The role of ethylene and cold temperature in the regulation of the apple POLYGALACTURONASE1 gene and fruit softening. Plant Physiol 153:294–305

Tadiello A, Pavanello A, Zanin D, Caporali E, Colombo L, Rotino GL, Trainotti L, Casadoro G (2009) A PLENA-like gene of peach is involved in carpel formation and subsequent transformation into a fleshy fruit. J Exp Bot 60:651–661

Tatsuki M, Mori H (2001) Phosphorylation of tomato 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase, LE-ACS2, at the C-terminal region. J Biol Chem 276:28051–28057

Thomas TR, Shackel KA, Matthews MA (2008) Mesocarp cell turgor in كرمة العنب الاوروبي L. berries throughout development and its relation to firmness, growth, and the onset of ripening. Planta 228:1067–1076

Tian MS, Prakash S, Elgar HJ, Young H, Burmeister DM, Ross GS (2000) Responses of strawberry fruit to 1-methylcyclopropene (1-MCP) and ethylene. Plant Growth Regul 32:83–90

Tian L, Magallanes-Lundback M, Musetti V, DellaPenna D (2003) Functional analysis of b- and e-ring carotenoid hydroxylases in أرابيدوبسيس. Plant Cell 15:1320–1330

Tieman DM, Taylor MG, Ciardi JA, Klee HJ (2000) The tomato ethylene receptors NR and LeETR4 are negative regulators of ethylene response and exhibit functional compensation within a multigene family. Proc Natl Acad Sci USA 97:5663–5668

Tieman DM, Ciardi JA, Taylor MG, Klee HJ (2001) Members of the tomato LeEIL (EIN3-like) gene family are functionally redundant and regulate ethylene responses throughout plant development. Plant J 26:47–58

Tieman D, Taylor M, Schauer N, Fernie AR, Hanson AD, Klee HJ (2006) Tomato aromatic amino acid decarboxylases participate in synthesis of the flavor volatiles 2-phenylethanol and 2 phenylacetaldehyde. Proc Natl Acad Sci USA 103:8287–8292

Tieman DM, Zeigler M, Schmelz E, Taylor MG, Rushing S, Jones JB, Klee HJ (2010) Functional analysis of a tomato salicylic acid methyl transferase and its role in synthesis of the flavor volatile methyl salicylate. Plant J 62:113–123

Tieman DM, McIntyre L, Blandon-Ubeda A, Bies D, Odabasi A, Rodriguez G, van der Knaap E, Taylor M, Goulet C, Mageroy MH, Snyder D, Colquoun T, Moskowitz H, Sims C, Clark D, Bartoshuk L, Klee H (2012) The chemical interactions underlying tomato flavor preferences. Curr Biol 22:1–5

Tigchelaar EC, Mcglasson WB, Franklin MJ (1978) Natural and ethephon-stimulated ripening of F1 hybrids of the ripening inhibitor (rin) and non-ripening (ولا) mutants of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) Australian J. Plant Physiol 5:449–456

Tomato Genome Consortium (2012) The tomato genome sequence provides insights into fleshy fruit evolution. Nature 485:635–641

Treutter D (2005) Significance of flavonoids in plant resistance and enhancement of their biosynthesis. Plant Biol 7:581–591

Verhoeyen ME, Bovy A, Gollins G, Muir S, Robinson S, de Vos CHR, Colliver S (2002) Increasing antioxidant levels in tomatoes through modification of the flavonoid biosynthetic pathway. J Exp Bot 53:2099–2106

Vicente AR, Saladié M, Rose JKC, Labavitch JM (2007) The linkage between cell wall metabolism and fruit softening: looking to the future. J Sci Food Agric 87:1435–1448

Vogel JT, Tieman DM, Sins CA, Odabasi AZ, Clark DG, Klee HJ (2010) Carotenoid content impacts flavor acceptability in tomato (Solanum lycopersicum). J Sci Food Agric 90:2233–2240

Vogg G, Fischer S, Leide J, Emmanuel E, Jetter R, Levy AA, Riederer M (2004) Tomato fruit cuticular waxes and their effects on transpiration barrier properties: functional characterization of a mutant deficient in a very-long-chain fatty acid b-ketoacyl-CoA synthase. J Exp Bot 55:1401–1410

Vrebalov J, Ruezinsky D, Padmanabhan V, White R, Medrano D, Drake R, Schuch W, Giovannoni J (2002) A MADS-علبة gene necessary for fruit ripening at the tomato ripening-inhibitor (rin) locus. Science 296:343–346

Vrebalov J, Pan IL, Arroyo AJ, McQuinn R, Chung M, Poole M, Rose J, Seymour G, Grandillo S, Giovannoni J, Irish VF (2009) Fleshy fruit expansion and ripening are regulated by the tomato SHATTERPROOF gene, TAGL1. Plant Cell 21:3041–3062

Wakabayashi K, Hoson T, Huber DJ (2003) Methyl de-esterification as a major factor regulating the extent of pectin depolymerization during fruit ripening: a comparison of the action of avocado (بيرسي امريكانا) and tomato (Lycopersicon esculentum) polygalacturonases. J Plant Physiol 160:667–673

Wang J, Chen G, Hu Z, Chen X (2007) Cloning and characterization of the EIN2-homology gene LeEIN2 from tomato. DNA Seq 18:33–38

Wheeler GL, Jones MA, Smirnoff N (1998) The biosynthetic pathway of vitamin C in higher plants. Nature 393:365–369

Wilkinson JQ, LanahanMB YenH-C, Giovannoni JJ, Klee HJ (1995) An ethylene-inducible component of signal transduction encoded by أبدا-Ripe. Science 270:1807–1809

Winkel-Shirley B (2001) Flavonoid biosynthesis. A colorful model for genetics, biochemistry, cell biology, and biotechnology. Plant Physiol 126:485–493

Wong D (2008) Enzymatic deconstruction of backbone structures of the ramified regions in pectins. Protein J 27:30–42

Yahia EM, Contreras-Padilla M, Gonzalez-Aguilar G (2001) Ascorbic acid content in relation to ascorbic acid oxidase activity and polyamine content in tomato and bell pepper fruits during development, maturation, and senescence. Lebensm-Wiss u-Technol 34:452–457

Yang Y, Wu Y, Pirrello J, Regad F, Bouzayen M, Deng W, Li Z (2010) Silencing Sl-EBF1 و Sl-EBF2 expression causes constitutive ethylene response phenotype, accelerated plant senescence, and fruit ripening in tomato. J Exp Bot 61:697–708

Yeats TH, Howe KJ, Matas AJ, Buda GJ, Thannhauser TW, Rose JKC (2010) Mining the surface proteome of tomato (Solanum lycopersicum) fruit for proteins associated with cuticle biogenesis. J Exp Bot 61:3759–3771

Yeats TH, Buda GJ, Wang Z, Chehanovsky N, Moyle LC, Jetter R, Schaffer AA, Rose JKC (2012a) The fruit cuticle of wild tomato species exhibit architectural and chemical diversity, providing a new model for studying the evolution of cuticle function. Plant J 69:655–666

Yeats TH, Martin LBB, Viart HM-F, Isaacson T, He Y, Zhao L, Matas AJ, Buda GJ, Domozych DS, Clausen MH, Rose JKC (2012b) The identification of cutin synthase: formation of the plant polyester cutin. Nat Chem Bio 8:609–611

Zhang B, Chen K, Bowen J, Allan A, Espley R, Karunairetnam S, Ferguson I (2006) Differential expression within the LOX gene family in ripening kiwifruit. J Exp Bot 57:3825–3836

Zhong S, Lin Z, Grierson D (2008) Tomato ethylene receptor-CTR interactions: visualization of NEVER-RIPE interactions with multiple CTRs at the endoplasmic reticulum. J Exp Bot 59:965–972

Zhong S, Fei Z, Chen Y-R, Zheng Y, Huang M, Vrebalov J, McQuinn R, Gapper N, Liu B, Xiang J, Shao Y, Giovannoni JJ (2013) Single-base resolution methylomes of tomato fruit development reveal epigenome modifications associated with ripening. Nat Biotechnol 31:154–159


المواد والأساليب

البناء البلازميد

The target site for CRISPR/Cas9-mediated RIPENING INHIBITOR (RIN) mutagenesis was selected using the CRISPR-P program (http://cbi.hzau.edu.cn/cgi-bin/CRISPR) (Supporting Information, Fig. S1a). The 20-bp oligos were cloned into AtU3d and AtU3b vectors and the sgRNA expression cassettes assembled into pYLCRISPR/Cas9-Ubi-H binary plasmid by Golden Gate ligation (Ma وآخرون., 2015 ). أغروباكتريوم توميفاسيانز-mediated transfer of T-DNA was used for stable transformation of tomato (Sun وآخرون., 2006 Kimura and Sinha, 2008 ). For the mutation analysis, genomic DNA was extracted from young tomato leaves using a Plant Genomic DNA Kit (Tiangen, China) and used as a template to amplify the RIN fragment using PCR and the fragments sent for sequencing. The primer pairs used for vector construction and mutation analyses are listed in Table S1.

المواد النباتية وظروف النمو

Wild-type (WT) tomato (Solanum lycopersicum Alisa Craig, AC) and RIN-CRISPR seedlings were grown in a glasshouse under long-day conditions (16 h : 8 h, light : dark photperiod) at a temperature of 26°C. For gene expression analysis, organs were collected, frozen in liquid N2, and stored at −80°C until RNA extraction. Three independent samplings were performed for each measurement.

Tomato fruit nuclei isolation and Western blotting

Nuclei were isolated from tomato fruits picked at B + 5 stage and assayed for RIN protein. Fruit samples were ground into a powder under liquid N2 and the mixture was extracted with buffer (0.25 M sucrose, 10 mM Tris-HCl pH7.5, 1 mM MgCl2, 0.5% PVP, 0.5% Triton X-100, Roche protease inhibitor tablet) and the suspension filtered using miracloth (475855 Millipore, Pittsburgh, PA, USA). After centrifugation at 10 000 ز for 10 min, the precipitate was washed with extraction buffer and centrifuged again at 10 000 ز for 10 min, and the pellet was resuspended in percoll buffer (0.25 M sucrose, 95% Percoll, 10 mM Tris-HCl pH7.5, Roche protease inhibitor tablet). The floating layer was collected after centrifugation at 10 000 ز for 10 min, diluted to 30% with extraction buffer, centrifuged at 10 000 ز for 10 min, to pellet the nuclei and stored at −80°C or used for SDS-PAGE assay.

Western blotting was carried out as described (Li وآخرون.، 2018). Briefly, protein extracts were separated on 10% SDS-PAGE gels and transferred to a polyvinylidene fluoride (PVDF) membrane blocked in 5% nonfat milk for 2 h at room temperature. A specific polyclonal antibody produced in rabbit raised against the C-terminal end of RIN (amino acids 75–242) was added in a ratio of 1 : 1000 and incubated for 2 h at room temperature. Membranes were washed with Tris-buffered saline plus Tween-20 three times, 15 min each time. The anti-rabbit horseradish peroxidase secondary antibody was added at a ratio of 1 : 10 000 and incubated for 2 h at room temperature. After three washes with Tris-buffered saline plus Tween-20, the membranes were visualized using a horseradish peroxidase-enhanced chemiluminescence system.

Ethylene production measurement

For the measurement of ethylene (ET) production, each fruit was placed in a sealed gas-tight 300 ml container at 25°C for 1 h, and a 1 ml headspace gas sample was analyzed using GC (6890N GC system Agilent, Folsom, CA, USA) equipped with a flame ionization detector (Ma وآخرون., 2016 ).

Colour measurement

A Hunter Lab Mini Scan XE Plus colorimeter (Hunter Associates Laboratory Inc., Reston, VA, USA) with the CIE L*a*b colour system was chosen for pericarp colour assay (Komatsu وآخرون.، 2016). At least six biological replicates were used for each assay.

Carotenoid content assay

Carotenoid extraction followed the methods reported by Xu وآخرون. ( 2006 ) 100 mg tomato fruit samples were ground to a powder and frozen at −80°C, 250 μl methanol was added, vortexed to mix, followed by 500 μl chloroform, vortexed again and 250 μl 50 mM Tris buffer (pH 7.5, containing 1 M NaCl) was added, followed by vortexing. After centrifugation (15 000 ز for 10 min at 4°C), the lower chloroform phase was collected. The chloroform extraction was repeated two or three times and the chloroform phases combined and dried under flowing N2. The residue was dissolved in 100 μl ethyl acetate (HPLC grade), and 50 μl transferred to HPLC sample analysis tubes. Carotenoid content was assayed according to the methods reported by Zheng وآخرون. ( 2015 ): A volume of 20 μl for each sample was absorbed for HPLC analysis, carried out using a Waters liquid chromatography system (e2695) equipped with a photodiode array (PDA) detector (2998). A C30 carotenoid column (250 mm × 4.6 mm YMC, Japan) was used to elute the carotenoids with a methanol: H2O (9 : 1, v/v, eluent A) solution and methyl tert-butyl ether (MTBE) (100%, eluent B) solution containing 0.01% (w/v) butylated hydroxytoluene (BHT). The linear gradient program was performed as follows: 8% B to 25% B for 30 min, 25% B to 70% B for 5 min, 70% B for 5 min, and back to the initial 8% B for re-equilibration for 10 min. The flow rate was 1 ml min −1 . To avoid light degradation of carotenoids the extraction and analysis were performed under subdued light.

Firmness measurement

The firmness of the pericarp was assayed using a penetrometer (TA-XT2i texture analyzer Stable Micro Systems, Stable Micro Systems Ltd, Surrey, UK) according to the manufacturer's instructions. At least six biological replicates were used for each assay.

Volatiles assays

Measurements of volatiles were carried out according to Zhang وآخرون. ( 2010 ), with modifications. First, 5 g of frozen flesh tissue was ground in liquid N2 and transferred to a 15-ml vial containing 5 ml of saturated sodium chloride solution. Before vials were sealed, 20 μl of 2-octanol (0.8 mg ml −1 ) was added as an internal standard and vortexed for 10 s.

For solid-phase microextraction (SPME), samples then were equilibrated at 40°C for 30 min before being exposed to a fiber coated with 50/30 μm DVB/CAR/PDMS (Supelco Co., Bellefonte, PA, USA). Volatiles were subsequently desorbed over 5 min at 230°C into the splitless injection port of the GC-flame ionization detector (FID). An Agilent 7890A GC equipped with an FID and a DB-WAX column (30 m × 0.32 mm, 0.25 μm internal diameter J&W Scientific, Folsom, CA, USA) was used for volatile analysis. Chromatography conditions were as follows: injector, 230°C initial oven temperature, 34°C held for 2 min, increased by 2°C min −1 to 60°C, then increased by 5°C min −1 to 220°C, and held for 2 min. Nitrogen was used as carrier gas at 1.0 ml min −1 . Volatiles were identified by comparison with retention times of authentic standards. Further identification of volatile compounds was by capillary gas chromatography-mass spectrometry (GC-MS) (7890A-5975C) performed using an HP-5 MS column (30 m × 0.25 mm, 0.25 μm J&W Scientific, Folsom, CA). Injection port temperature was 240°C, with a split ratio of 5 : 1. Helium was used as the carrier gas at a rate of 1.0 ml min −1 . The column temperature was held at 40°C for 2 min, increased by 5°C min −1 to 60°C, then increased by 10°C min −1 to 250°C, and held for 5 min. MS conditions were as follows: ion source, 230°C electron energy, 70 eV multiplier voltage, 1247 V GC-MS interface zone, 280°C and a scan range, 30–250 mass units. Volatiles were identified on the basis of a comparison of their electron ionization (EI) mass spectra to published data and data from authentic standards. Quantitative determination of compounds was carried out using the peak of the internal standard as a reference value and calculated on the basis of standard curves constructed with authentic compounds.

Ethylene, 1-methylcyclopropene (1-MCP) and propylene treatment

Tomato fruits at the mature green (MG) stage, before any sign of colour change, were placed in an air-tight 1-l plastic container with 100 ppm ET, 1000 ppm propylene or 10 ppm 1-MCP. 1000 ppm propylene is equivalent to 10 ppm ET treatment (McMurchie وآخرون., 1972 ) and is used in order to distinguish it from endogenous ET production by GC equipment. The treatment was conducted continually in an incubator under a 16 h : 8 h, light : dark photoperiod at 25°C, with at least three biological replicates for each treatment. RIN-CRISPR tomato fruits treated with ET for 48 h, and control WT and RIN-CRISPR treated with air, were chosen for gene expression assay using qRT-PCR. The gas environments (air, ET, propylene, 1-MCP) were replenished every 24 h.

RNA isolation and quantitative reverse transcription (qRT)-PCR

Isolation of RNA from tomato fruit pericarp at different ripening stages was as described previously (Zhu وآخرون.، 2015). Total RNA extraction from tomato fruit pericarp was carried out using Trizol reagent, and RNA integrity was verified by 1.5% (v/v) agar gel electrophoresis. Genomic DNA was removed from RNA preparations by digestion with DNase I (Invitrogen, cat. no. AM1907), and RNA quality and quantity were confirmed by spectrophotometry (Thermo Scientific, Waltham, MA, USA NanoDrop 1000). RNA was reverse-transcribed into cDNA using cDNA synthesis kit (Bio-RAD, cat. no. 1708890) according to the manufacturer's instructions. qRT-PCR was conducted using FastStart Essential DNA Green Master (Roche, cat. no. 06402712001) with a LightCycler480 (Roche). Relative gene expression values were calculated using the 2 -ΔΔCt method (Livak and Schmittgen, 2001 ). The tomato ACTIN gene (Solyc03g078400) was used as an internal reference gene. At least three biological replicates were included for each point, and each replicate was from independent sampling. The primer pairs used in qRT-PCR analyses are listed in Table S2.

Water loss

The water lost by tomato fruits was calculated as FW (%) = fruit weight (g) – fresh fruit weight (g)/ fresh fruit weight (g) × 100%. More than ten biological replicates were used for each assay.

Promoter sequence and motif assay

Promoter sequences 2.0 kb in length were downloaded from Sol Genomics Network (https://solgenomics.net/), various CArG-box elements were from Fujisawa وآخرون. ( 2013 ). The GCC-box, a characteristic رابطة الدول المستقلة-element binding site for ERFs, was from Licausi وآخرون. ( 2013 ). An AP2/ERF binding motif, ATCTA was from Welsch وآخرون. ( 2007 ).

تحليل احصائي

Microsoft Excel 2010 and S PSS (IBM SPSS Statistics, v.22 SPSS Inc., Chicago, IL, USA) were used for statistical analyses. Duncan's multiple range test was used (ص & lt 0.05).


WineCrisp: New Apple Was More Than 20 Years In The Making

A new, late-ripening apple named WineCrisp&trade which carries the Vf gene for scab resistance was developed over the past 20 plus years through classical breeding techniques, not genetic engineering. License to propagate trees will be made available to nurseries through the University of Illinois.

Being resistant to apple scab is a big plus for growers, said University of Illinois plant geneticist Schuyler Korban, as it significantly reduces the number of chemical fungicide sprays. "Apple scab is the number one disease that growers have to spray for &ndash 15 to 20 times per season &ndash so not having to spray for apple scab lowers the cost for the grower and is better for the environment."

Why does it take over 20 years to make an apple? "It takes a long time to develop an apple because you want to test it in different locations, you want to observe it over a number of years, and it takes awhile for an apple to get noticed," said geneticist Schuyler Korban. "I liked it the first time I saw it and I liked the flavor. It has an excellent mix of sugar and acid and a very pleasant flavor, but I was hesitant because of the finish &ndash it's not glossy."

Korban thought the finish might pose a problem because consumers are accustomed to seeing waxed fruit in stores and may not like the matte finish that Korban calls "scarfy" or dull. "Red Delicious is a very good looking apple, but has no flavor, very bland. It's still ranked as the number one apple in the industry however, there are more new apple varieties available now."

After some time, Korban decided that the crispness and the flavor would be more important factors to consumers than the finish and continued to develop the new apple.

His research, in collaboration with breeders at Rutgers and Purdue Universities, will be published in a 2009 issue of the journal of HortScience, and a U.S. patent is currently pending. The apple is available now to nurseries who want to apply for a license to propagate trees and make them available to apple growers nationwide. "There is a nursery in the southeastern part of the United States that really liked the apple and feel that there is a market for it in the south so they're getting a license to grow it."

It also takes time for a new orchard or even for an existing orchard to plant new apple varieties. But when WineCrisp&trade cuttings are grafted into a fast-growing root stock, Korban says there could be fruit on the tree in as little as three years.

Korban said that the tree is extremely productive and the fruit is firm, but it's not a bright red color. "It's more of a dark red and looks like a deep red wine so we wanted to include 'wine' in the name. It also resembles an older variety that consumers are familiar with called Winesap. "When you pick it up and squeeze it, it's very firm," he said. "We used to call it 'the Rock.' We wanted that characteristic to be in the name so we added 'crisp' and named it WineCrisp&trade.

"There's a market for apples with different flavors, different textures, different ripening and maturity dates &ndash you don't know what the likes and dislikes of the consumer will be," said Korban. "Some of our recent releases are varieties that focus on late ripening which would prolong the apple-growing season and WineCrisp&trade matures two weeks after Red Delicious. They can be harvested all the way through to the end of October. And in good cold storage, they'll keep for eight to nine months. That's another important trait of this variety &ndash it keeps very well in cold storage."

The original cross in the breeding process was done at Rutgers in 1989. The seeds were grown into seedlings and inoculated with apple scab at Purdue. Those seedlings that demonstrated resistance to apple scab were split between the three universities as a part of the Purdue-Rutgers-Illinois (PRI) Cooperative Breeding Program, which has been very successful in naming and releasing over 25 disease-resistant apple varieties, some with other collaborating partners around the world. Because the University of Illinois made the selection, U of I will be the primary licensing institution.

Funding for the research was provided by the University of Illinois and PRI.

مصدر القصة:

المواد المقدمة من University of Illinois at Urbana-Champaign. ملاحظة: يمكن تعديل المحتوى حسب النمط والطول.


Legal status: western countries

In different Western countries, selected ripening agents are allowed to be applied to ripen specific fruits under controlled condition. In this process, ethylene is injected to the fruit ripening chambers in a controlled manner, to help instigating the ripening process [1].

أمريكا الشمالية

In USA, the United States’ NOSB [National Organic Standard Board] recommends the use of ethylene for post-harvest ripening of tropical fruits and de-greening of citrus this is stated in the ‘Formal Recommendation by the National Organic Standard Board (NOSB) to the Organic Program (NOP)’ [17]. The United States Environmental Protection Agency (EPA) allows the use of ethylene as plant growth regulator and herbicide. Additionally, ethylene is exempt from the requirement of a tolerance (maximum residue level) when used as a growth regulator on fruits and vegetables [71].

The regulations set by the Canadian Food Inspection Agency (CFIA) imposes that no person shall market, produce, import, export, or take part in interprovincial trade of fruits and vegetables unless it is not contaminated, edible, free of any live insect or other living thing that may be injurious to health, and produced hygienically [12]. CFIA gives more emphasis on ensuring the quality of water used in food and vegetable processing the following features are suggested to ensure production under hygienic conditions:

No stagnant or polluted water should be used in the washing or fluming of the produce

Only potable water is to be used in the final rinsing of the produce to remove any surface contaminant before packing

The final rinse water, if reused, is used only in the initial washing or fluming of the product.

أوروبا

United Kingdom’s Soil Association permits the use of ethylene to ripen bananas and kiwi [Soil Association Organic Standards, rev 16.4, June 2011] [19]. ال UK Food Safety Act enacted in 1990 imposes that any person who renders any food injurious to health by means of any of the operations—adding any article or substance to the food, using any article or substance as an ingredient in the preparation of the food, abstracting any constituent from the food, and subjecting the food to any other process or treatment with intent that it shall be sold for human consumption, shall be guilty of an offense [14].

The European Food Safety Authority (EFSA) under the regulation (EC) No 396/2005 developed the Standard Sample Description (SSD), which is a standardized model for the reporting of harmonized data on analytical measurements of chemical substances present in food, feed, and water [72]. As an attempt to make significant reforms of the Common Market Organization (CMO) for certain agricultural products, the European Union extended its approach to the promotion, quality, and marketing standards for fresh and processed fruit and vegetables. Provisions for a management committee that apply to the fruit and vegetable sector as well as a range of other agricultural products came into effect from January 1, 2008, under Council Regulation (EC) No. 1234/2007. Key objectives of the regulation are as follows [73]:

Improvement of product quality

Boosting products’ commercial value

Promotion of products, whether in a fresh or processed form

Environmental measures and methods of production respecting the environment, including organic farming

Crisis prevention and management.

Other international organizations

Evidently, the laws in different developed countries do not completely prohibit using artificial ripening agents, and often permit the control use of ethylene gas for artificial fruit ripening. The International Federation of Organic Agriculture Movements’ (IFOAM) enlists ethylene gas as ‘Only for ripening fruits’ in the IFOAM Indicative List of Substances for Organic Production and Processing. Similarly, the Asia Regional Organic Standard (AROS) developed by Global Organic Market Access (GOMA) (a project of FAO), IFOAM, and UNCTAD (United Nations Conference on Trade and Development) permit the usage of ethylene for the ripening of kiwifruit, bananas, and other tropical fruits [74].


P. peruviana: One of the main drawbacks of P. peruviana seems to be the long growing season required before fruits can be harvested. Production of fruit can also be somewhat moderate. In addition, reliable sources for seed are limited. Some of these issues are being addressed by Dr. Durner in his trials.

An advantage of P. peruviana is that the plants are larger and more upright and that the fruit does not abscise when ripe, giving more control and easier conditions (not stooping on the ground) for harvesting. On the other hand, because they don’t abscise when ripe, they must be cut off the plant, which makes harvest more time consuming.

P. pruinosa: Ground cherry gives the grower a much longer harvest window and seems to be more productive than P. peruviana. There is also ample and varied sources of seed, though there is little documentation about specific differences between varieties. The major disadvantage of P. pruinosa is the very low, sprawling habit of the plant, which makes harvest difficult.

Mike Brown is the owner of Pitspone Farm — a small-acreage berry farm and nursery in central New Jersey.